Взятие материала для бактериологического исследования (бакпосева) с глаза
Взятие материала для бактериологического исследования с различных объектов глаза при его свежих проникающих ранениях осуществляется неодинаково.
Видимые загрязнения конъюнктивального мешка берут пинцетом или с помощью шпателя. Забор материала с конъюнктивы осуществляют прокаленной и охлажденной платиновой петлей из глубины конъюнктивального мешка, но не с краев век и не из углов глазной щели, где, как известно, может быть примесь микробов с близлежащих участков кожи.
Забор влаги передней камеры при проникающих ранениях роговицы осуществляют путем отсасывания камерной жидкости стандартным медицинским шприцем с тонкой тупоконечной иглой. При ранах с неадаптированными краями отсасывают истекающую через рану жидкость. Если раны небольшие но размеру и имеют хорошо адаптированные края, то производят пункцию передней камеры в области роговичной части лимба. При этом исходят из соображений, что данная манипуляция является, по существу, минимальной травмой для глаза, а эвакуация камерной влаги способствует механическому удалению бактерий, которые могут быть занесены в переднюю камеру при ранениях роговой оболочки.
Забор хрусталиковых масс для бактериологического исследования осуществляется в тех случаях, когда проникающее ранение переднего отрезка глаза сопровождается повреждением хрусталика и хирургическая обработка раны предусматривает экстракцию травматической катаракты. Хрусталиковые массы отсасываются во время операции с помощью шприца с тупоконечной иглой с достаточно широким просветом.
Отсеченные ножницами участки внутренних оболочек глаза (радужки) переносят в питательную среду пинцетом. Радужку отсекают экономно и только в тех случаях, если при выпадении в рану роговицы она ущемилась и вправить ее в переднюю камеру во время хирургической обработки невозможно ввиду ее размозжения и явной нежизнеспособности.
При ранениях склеры, сопровождающихся выпадением стекловидного тела, последнее отсекают ножницами во время хирургической обработки и отсасывают шприцом. При этом игла шприца не должна погружаться в рану, чтобы не протолкнуть, возможно, находящиеся в ее области бактерии в полость глазного яблока.
Извлеченное из глаза инородное тело переносят в питательную среду целиком пинцетом.
Выполнение бактериологического исследования позволяет проводить антибактериальную терапию с учетом видовой и индивидуальной чувствительности микрофлоры. Ответ получают спустя 48-72 ч с момента начала исследования. Поэтому в ранние сроки лечение проводится без учета чувствительности микрофлоры препаратами широкого спектра действия.
Известны экспресс-методы бактериальной диагностики, основанные на фиксации тонких нарушений метаболизма в микробной клетке. С этой целью после 4-6 ч инкубации, необходимых для устранения процессов жизнедеятельности микробной клетки, распознают вид микроба по продуктам метаболизма с помощью фотоколориметрического или хро-матографического анализа. Несмотря на привлекательность перспективы за несколько часов провести идентификацию микробов в области раны, ни один из этих методов не нашел распространения в офтальмологии, потому что необходимо сложное техническое оснащение, сЦециальные питательные среды и большое количество исследуемого материала.
Л. Е. Федорищевой была сделана попытка разработки доступного метода экспресс-диагностики чувствительности микробной флоры к антибиотикам по определению активности каталазы. Суть методики заключалась в следующем. Содержимое раны помещают в мясопептонный бульон. Пробирку выдерживают в термостате в течение 2-3 ч, после чего в исходной культуре определяют каталазу с помощью 1 капли пергидроля. Если при добавлении пергидроля появляется пена из пузырьков газа, то реакция на каталазу положительная и культуру следует развести бульоном так, чтобы прекратилось выделение пены, то есть реакция на каталазу стала отрицательной. Затем следует разлить культуру в малые пробирки по числу имеющихся дисков, 2-3 пробирки должны быть контрольными.
В опытные пробирки помещают диски, пропитанные определенными антибиотиками. Затем все пробирки помещают в термостат не менее чем на 5 ч, чтобы усилить активность каталазы, и добавляют по 1 капле пергидроля в каждую пробирку. Через 15 мин фиксируют конечный результат по высоте столбика пены и сравнивают его с высотой столбика пены в контрольной иробиркс. Если пена отсутствует или не превышает 1/4 столбика пены в контроле, то микробная флора чувствительна к данному антибиотику. Если высота стояния пены больше 1/4 контроля, то микробная флора слабо чувствительна к испытуемому антибиотику. При сравнении разработанной автором методики с традиционным определением чувствительности к антибиотикам методом бумажных дисков результат совпадения составил 93%.
При этом автор рекомендует применять разработанный экспресс-метод только как ориентировочный, так как при его осуществлении нет уверенности в завершенности обменных процессов, происходящих в микробной клетке. Кроме того, не следует забывать, что в 30-50% случаев прободных ранений рост микрофлоры в посевах отсутствует даже при развившемся гнойном воспалительном процессе в глазу.
