В статьях на сайте использованы следующие сокращения:

• °F — температура по Фаренгейту
• °C — температура по Цельсию
• 5-НТ — 5-гидроксииндолуксусная кислота мочи
• АБ — антибиотик(и)
• АБЛА — аллергический бронхолегочный аспергиллез
• АБТ — антибактериальная терапия
• АВ — атриовентрикулярный
• АГ — артериальная гипертензия
• АГн — антиген
• АД — артериальное давление
• АДГ — антидиуретический гормон
• АДС — анатоксин дифтерийно-столбнячный
• АДС-М — анатоксин дифтерийно-столбнячный (малые дозы)
• АДФ — аденозиндифосфорная кислота, аденозиндифосфат
• АКДС — анатоксин коклюшно-дифтерийно-столбнячный
• АКТГ — адренокортикотропный гормон
• АКШ — аортокоронарное шунтирование
• АЛТ — аланинаминотрансфераза
• амер. — американский
• АМК — азот мочевины крови
• АМФ — аденозинмонофосфорная кислота, аденозинмонофосфат
• АНА — антинуклеарные антитела
• анат. — анатомический
• англ. — английский
• АНЦА — антинейтрофильные цитоплазматические антитела
• АПФ — ангиотензин-превращающий фермент
• АРВТ — антиретровирусная терапия
• АРП — активность ренина в плазме крови
• АСК — аминосалициловая кислота
• ACT — аспартатаминотрансфераза
• АТл — антитело
• АТФ — аденозинтрифосфорная кислота, аденозинтрифосфат
• АуД — аутосомно-доминантный
• АуР — аутосомно-рецессивный
• АФП — α-фетопротеин
• АФС — антифосфолипидный синдром
• АХЭ — ацетилхолинэстераза
• АЦХ — ацетилхолин
• АЧТВ — активированное частичное тромбопластиновое время
• БА — бронхиальная астма
• БАД — биологически активная добавка
• БАЛ — бронхоальвеолярный лаваж
• БАР — биполярное аффективное расстройство (I или II типа)
• БКК — большой круг кровообращения
• БЛНПГ — блокада левой ножки пучка Гиса
• БМСЭ — бюро медико-социальной экспертизы
• БП — брюшная полость
• БПНПГ — блокада правой ножки пучка Гиса
• БРА — блокатор рецепторов ангиотензина
• БРД - болезнь Розаи-Дорфмана
• БРМ — базовые реанимационные мероприятия
• БРНС — быстро разрешившееся необъяснимое событие
• БЦЖ — бацилла Кальметта-Герена
• в т.ч. — в том числе
• в. — век
• в/ — внутри... в сложносоставных словах (напр.
• в/сосудистый, в/черепной и т.п.)
• в/а — внутриартериально
• в/в — внутривенно
• в/к — внутрикожно
• в/м — внутримышечно
• вв. — века
• в-во — вещество
• ВВЭ — военно-врачебная экспертиза
• ВГД — внутриглазное давление
• ВГЧ — вирус герпеса человека
• ВДП — верхние дыхательные пути
• ВЖК — внутрижелудочковое кровоизлияние
• ВЗК — воспалительные заболевания кишечника
• ВЗОМТ — воспалительные заболевания органов малого таза
• ВИП — вазоактивный интестинальный пептид
• ВИЧ — вирус иммунодефицита человека
• ВМП — высокотехнологичная медицинская помощь
• ВМС — внутриматочное средство (спираль)
• ВН — вирусная нагрузка
• ВНС — вегетативная нервная система
• ВОВ — Великая Отечественная война
• ВОГМ — высокогорный отек головного мозга
• ВОЗ — Всемирная организация здравоохранения
• ВОЛ — высокогорный отек легких
• ВОМК — врач, осуществляющий медицинский контроль
• ВОП — врач общей практики
• ВПВ — верхняя полая вена
• ВПГ — вирус простого герпеса
• ВПР — врожденные пороки развития
• ВПС — врожденный порок сердца
• ВПЧ — вирус папилломы человека
• ВРТ — вспомогательные репродуктивные технологии
• ВСО — водно-солевой обмен
• ВЧД — внутричерепное давление
• ВЧИВЛ — высокочастотная искусственная вентиляция легких (HFV)
• ВЭБ — вирус Эпштейна-Барр
• г — грамм
• г. — год
• Г-6-ФД — глюкозо-6-фосфатдегидрогеназа
• ГАМК — гамма-аминомасляная кислота
• ГБ — гипертоническая болезнь
• ГБН — гемолитическая болезнь новорожденного
• ГБО — гипербарическая оксигенация
• ГГПТ — γ-глутамилтранспептидаза
• ГЗТ — гиперчувствительность замедленного типа
• гист. — гистологический
• ГК — грудная клетка
• ГКМП — гипертрофическая кардиомиопатия
• ГКС — глюкокортикостероид(ы)
• ГЛГ — гемофагоцитарный лимфогистиоцитоз
• ГЛПС — геморрагическая лихорадка с почечным синдромом
• ГМ — головной мозг
• ГМ-КСФ — гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор
• ГМФ — гуанозинмонофосфат
• ГнРГ — гонадотропин-рилизинг-гормон
• ГНТ — гиперчувствительность немедленного типа
• ГПОД — грыжа пищеводного отверстия диафрагмы
• ГРДС — гипоксическая реакция дыхательной системы
• греч. — греческий
• ГТФ — гуанозинтрифосфат
• ГУС — гемолитико-уремический синдром
• Гц — герц
• ГЭБ — гематоэнцефалический барьер
• ГЭР — гастроэзофагеальный рефлюкс
• ГЭРБ — гастроэзофагеальная рефлюксная болезнь
• дБ — децибел
• ДВС — диссеминированное внутрисосудистое свертывание
• ДГПЖ — доброкачественная гиперплазия предстательной железы
• ДГТ — дигидротестостерон
• ДД — дифференциальная диагностика, дифференциально-диагностический
• ДДБА — длительно действующие β₂-агонисты
• ДДК — дифференциально-диагностический критерий (критерии)
• ДИ — доверительный интервал
• ДК — диагностический критерий
• ДКА — диабетический кетоацидоз
• ДКМП — дилатационная кардиомиопатия
• ДМЖП — дефект межжелудочковой перегородки
• ДМПП — дефект межпредсердной перегородки
• ДМС — добровольное медицинское страхование
• ДН — дыхательная недостаточность
• ДНК — дезоксирибонуклеиновая кислота
• ДНТ — дефекты нервной трубки
• ДОФА — дигидроксифенилаланин
• ДП — дыхательные пути
• ДПК — двенадцатиперстная кишка
• ДПМ — дата последней менструации
• ДПП — давление в правом предсердии
• др. — другие
• ДТП — дорожно-транспортное происшествие
• ДЦП — детский церебральный паралич
• ЕД — единица действия
• ЖВП — желчевыводящие пути
• ЖДА — железодефицитная анемия
• ЖЕЛ — жизненная емкость легких
• ЖКБ — желчекаменная болезнь
• ЖКК — желудочно-кишечное кровотечение
• ЖКТ — желудочно-кишечный тракт
• ЖНВЛП — жизненно необходимые и важные лекарственные препараты (список, перечень)
• ЖТ — желудочковая тахикардия
• ЗВУР — задержка внутриутробного развития
• ЗЛ — здоровые люди (лица)
• ЗНО — злокачественное новообразование
• ЗО — здравоохранение
• ЗОЖ — здоровый образ жизни
• ЗСН — застойная сердечная недостаточность
• иАПФ — ингибиторы ангиотензин-превращающего фермента
• ИБС — ишемическая болезнь сердца
• ИВЛ — искусственная вентиляция легких
• ИГКС — ингаляционные глюкокортикостероиды
• ИЗЛ — интерстициальные заболевания легких
• ИКД — имплантируемый кардиовертер-дефибриллятор
• ИКП — иммунокомпрометированные пациенты
• ИЛ — интерлейкин
• ИЛДБ — интегрированное лечение детских болезней
• ИМ — инфаркт миокарда
• ИМАО — ингибитор(ы) моноаминоксидазы
• ИМбпБТ — инфаркт миокарда без подъема сегмента ST
• ИМП — инфекция мочевых (мочевыводящих) путей
• ИМпST — инфаркт миокарда с подъемом сегмента ST
• ИМТ — индекс массы тела
• ИОЛ — интраокулярная линза
• ИПП — ингибиторы протонной помпы (протонного насоса)
• ИППП — инфекции, передаваемые половым путем
• ИСС — индивидуальные спасательные средства
• ИСТ - иммуносупрессивная терапия
• истор. — историческое
• итал. — итальянский
• ИТП — идиопатическая тромбоцитопеническая пурпура
• ИТШ — инфекционно-токсический шок
• ИФА — иммуноферментный анализ
• КА — коронарная(ые) артерия(и)
• КАГ — коронарография
• КБМП - качество и безопасность медицинской помощи
• кВ — киловольт
• кг — килограмм
• КДБА — короткодействующие β2-агонисты
• КДД — конечно-диастолическое давление
• КДО — конечно-диастолический объем
• КДР — конечно-диастолический размер
• кит. — китайский
• ккал — килокалория
• кл. — клетки, клеток
• КМП — качество медицинской помощи
• КоА — коэнзим А, кофермент А
• КОЕ — колониеобразующая единица
• КОК — комбинированные оральные контрацептивы
• КПТ — когнитивно-поведенческая терапия
• КР — клинические рекомендации
• КСД — конечно-систолическое давление
• КСО — конечно-систолический объем
• КСР — конечно-систолический размер
• КТ — компьютерная томография
• КТВР — компьютерная томография высокого разрешения
• КТГ — кардиотокография
• КФК — креатинфосфокиназа
• КЩС — кислотно-щелочное состояние
• л — литр
• л/о — ложноотрицательный
• л/п — ложноположительный
• ЛА — легочная артерия
• ЛАГ — легочная артериальная гипертензия лат. — латинский
• ЛГ — лютеинизирующий гормон
• ЛДГ — лактатдегидрогеназа
• ЛЖ — левый желудочек
• ЛОР — имеющий отношение к оториноларингологии (ЛОР-врач, ЛОР-органы)
• ЛП — лекарственный препарат
• ЛПВП — липопротеины высокой плотности
• ЛПНП — липопротеины низкой плотности
• ЛПОНП — липопротеины очень низкой плотности
• ЛПУ — лечебно-профилактическое учреждение ЛС — лекарственное средство
• ЛУ — лимфатический(ие) узел(лы)
• ЛФК — лечебная физкультура
• м.б. — может (мог, могут, могли) быть
• М/Ж — соотношение мужчин и женщин
• максД — максимальная доза
• максНД — максимальная начальная доза
• максРД — максимальная разовая доза
• максСД — максимальная суточная доза
• МАНК — метод амплификации нуклеиновых кислот
• МАО — моноаминоксидаза
• МВП — мочевыводящие пути
• мг — миллиграмм
• МДБ — мышечная дистрофия Беккера
• МДД — мышечная дистрофия Дюшенна
• МДМА — метилендиоксиметамфетамин
• ME — международная единица
• мед. — медицинский
• мес — месяц
• МЖ — молочная железа
• МЖП — межжелудочковая перегородка
• М3 — министерство здравоохранения
• мин — минут(а)
• минД — минимальная доза
• минСД — минимальная суточная доза
• МКБ — мочекаменная болезнь
• МКБ-10 — Международная классификация болезней 10-го пересмотра
• МКБ-11 —Международная классификация болезней 11-го пересмотра
• мкВ — микровольт
• мкг — микрограмм
• МКК — малый круг кровообращения
• мкл — микролитр
• мл — миллилитр
• млн — миллион
• млрд — миллиард
• мм — миллиметр
• мм рт.ст. — миллиметр ртутного столба
• ммоль — миллимоль
• МНН — международное непатентованное наименование
• МНО — международное нормализованное отношение
• МО — медицинская организация
• МП — медицинская помощь
• МПН — миелопролиферативные новообразования
• МПС — мочеполовая система
• МР — магнитно-резонансный
• МР-венография — МРТ вен и синусов головного мозга
• мРНК — матричная РНК
• МРТ — магнитно-резонансная томография
• МРХПГ — магнитно-резонансная холангиопанкреатография
• мс — миллисекунда
• МСКТ — мультиспиральная компьютерная томогра-
• фия
• МСЭ — медико-социальная экспертиза
• МТ — масса тела
• мтДНК — митохондриальная дезоксирибонуклеиновая кислота
• МТР — масса тела при рождении
• н.э. — нашей эры
• НА — нервная анорексия
• НАД — никотинамидадениндинуклеотид
• НАДН — никотинамидадениндинуклеотид (восстановленный)
• НАДФ — никотинамидадениндинуклеотидфосфат
• НАЖБП — неалкогольная жировая болезнь печени напр. — например
• НАСГ — неалкогольный стеатогепатит
• НБ — нервная булимия
• НДО — негативный детский опыт
• нед — недели
• нем. — немецкий
• НИВЛ — неинвазивная вентиляция легких
• НЛР — нежелательная лекарственная реакция
• нм — нанометр
• НМГ — низкомолекулярный гепарин
• НМИЦ — национальный медицинский исследовательский центр
• НМП — неотложная медицинская помощь
• НМТ — низкая масса тела
• НПА — нормативно-правовой акт
• НПВ — нижняя полая вена
• НПВС — нестероидные противовоспалительные средства
• НС — нервная система
• НСГ — нейросонография
• НЭК — некротический энтероколит
• НЯК — неспецифический язвенный колит
• ОАК — общий анализ крови
• ОАМ — общий анализ мочи
• ОАП — открытый артериальный проток
• ОБП — органы брюшной полости
• ОГБ — острая горная болезнь
• ОГМ — отек головного мозга
• ОДН — острая дыхательная недостаточность
• ОДП — обструкция дыхательных путей
• ОЖСС — общая железосвязывающая способность сыворотки
• ОЗ — организация здравоохранения
• ок. — около
• ОКР — обсессивно-компульсивное расстройство
• ОКС — острый коронарный синдром
• ОЛЛ — острый лимфобластный лейкоз
• ОМП - оказание медицинской помощи
• ОМС — обязательное медицинское страхование
• ОМТ — органы малого таза
• ОНМК — острое нарушение мозгового кровообращения
• ОНМП — отделение неотложной (медицинской) помощи
• ОНМТ — очень низкая масса тела
• ООЗ — органы (организации/управления) здравоохранения
• ООЛ — остаточный объем легких
• ООН — Организация Объединенных Наций
• ОПЖ — ожидаемая продолжительность жизни
• ОПН — острая почечная недостаточность
• ОПП — острое повреждение почек
• ОПСС — общее периферическое сосудистое сопротивление
• ОРВИ — острая респираторная вирусная инфекция
• ОРДС — острый респираторный дистресс-синдром
• ОРЗ — острое респираторное заболевание
• ОРИТ — отделение реанимации и интенсивной терапии (ICU)
• ОСВО — общее содержание воды в организме
• ОФВ — объем форсированного выдоха
• ОФВ₁ — объем форсированного выдоха за 1-ю секунду
• ОЦК — объем циркулирующей крови
• п.з. — поле зрения (микроскопа)
• п/к — подкожно
• ПАВ — психоактивные вещества
• ПВ — протромбиновое время
• ПВК — периферический венозный катетер
• ПВЛ — перивентрикулярная лейкомаляция
• Пг — простагландин
• ПГГ — программа государственных гарантий оказания гражданам РФ бесплатной медицинской помощи
• ПДКВ — положительное давление конца выдоха (PEEP)
• ПЖ — правый желудочек
• ПЖЖ — поджелудочная железа
• ПЖК — подкожная жировая клетчатка (гиподерма)
• ПИ - полицитемию истинную
• ПКА — почечный канальцевый ацидоз
• ПКМД — поясно-конечностная мышечная дистрофия
• ПЛСГ — пятнистая лихорадка Скалистых гор
• ПМДР — предменструальное дисфорическое расстройство
• ПМК — пролапс митрального клапана
• ПМС — предменструальный синдром
• ПМФ — первичный миелофиброз
• ПМСП — первичная медико-санитарная помощь
• ПНА — передняя нисходящая артерия
• ПНЖК — полиненасыщенные жирные кислоты
• ПОРИТ — педиатрическое отделение реанимации и интенсивной терапии
• ПОТ — постуральная ортостатическая тахикардия
• ППВ — пневмококковая полисахаридная вакцина
• ППОАК — прямые пероральные антикоагулянты ППТ — площадь поверхности тела
• ПСА — простатоспецифический антиген
• ПСВ — пиковая скорость выдоха
• ПСВХ — прогрессирующий семейный внутрипеченочный холестаз
• ПТ — психотерапия
• ПТВ — протромбиновое время
• ПТГ — паратиреоидный гормон
• ПТИ — протромбиновый индекс
• ПТСР — посттравматическое стрессовое расстройство
• ПФЭ — пищевой фолатный эквивалент
• ПЦР — полимеразная цепная реакция
• ПШГ — пурпура Шенлейна-Геноха
• ПЩЖ — паращитовидные железы
• ПЭТ — позитронно-эмиссионная томография р/ —раз в ... (с, мин, ч, сут и т.п.)
• РА — ревматоидный артрит
• РААС — ренин-ангиотензин-альдостероновая система
• разг. — разговорный
• разл. — различный
• РАС — расстройство аутистического спектра
• РДС — респираторный дистресс-синдром
• рим. — римский
• РИФ — реакция иммунофлюоресценции
• РКИ — рандомизированные клинические исследования
• РКМП — рестриктивная кардиомиопатия
• РИГА — реакция непрямой гемагглютинации
• РНК — рибонуклеиновая кислота
• РОГК — рентгенография (рентгенограмма) органов грудной клетки
• РОЛСНС — рекомендации по оценке и лечению при сортировке в неотложных ситуациях
• РИГА — реакция прямой гемагглютинации
• р-р — раствор
• р-ритель — растворитель
• РРК — рецепторы ретиноевой кислоты
• РРМ — расширенные реанимационные мероприятия
• РСВ — респираторно-синцитиальный вирус
• РСД — расстройство стереотипных движений
• РСК — реакция связывания комплемента
• РТГА — реакция торможения гемагглютинации
• РТНГА — реакция торможения непрямой гемагглютинации
• РФ — Российская Федерация
• РХР — ретиноевые Х-рецепторы
• РЧА — радиочастотная абляция
• РЭС — ретикулоэндотелиальная система
• с — секунда
• св-во — свойство
• СВДС — синдром внезапной детской смерти
• СГЯ — синдром гиперстимуляции яичников
• СД — сахарный диабет
• СД-1 — сахарный диабет 1 -го типа
• СД-2 — сахарный диабет 2-го типа
• СДВГ — синдром дефицита внимания и гиперактивности
• СЕ — субъединица
• СЖК — свободные жирные кислоты
• СЗСТ — системное(ые) заболевание(я) соединительной ткани
• СИЗ — средства индивидуальной защиты
• СИОЗС — селективный ингибитор обратного захвата серотонина
• СИОЗСН — селективные ингибиторы обратного захвата серотонина и норэпинефрина
• СКА — серповидно-клеточная анемия
• СКВ — серповидно-клеточная болезнь
• СКВ — системная красная волчанка
• СКФ — скорость клубочковой фильтрации
• СЛР — сердечно-легочная реанимация
• см — сантиметр
• см вод.ст. — сантиметр водяного столба
• СМЖ — спинномозговая жидкость
• СМИ — средства массовой информации
• СМО — страховая медицинская организация
• СМП — скорая медицинская помощь
• СМЭ — судебно-медицинская экспертиза
• СН — сердечная недостаточность
• СНСАДГ — синдром неадекватной секреции АДГ
• СОАС — синдром обструктивного апноэ сна (во сне)
• совр. — современный
• СОЭ — скорость оседания эритроцитов
• СПИД — синдром приобретенного иммунодефицита
• СПКЯ — синдром поликистозных яичников
• СПОН — синдром полиорганной недостаточности
• СРБ — С-реактивный белок
• СРК — синдром раздраженного кишечника
• СрСД — средняя суточная доза
• ССВ — синдром Стерджа-Вебера
• ССВР — синдром системной воспалительной реакции
• ССЗ — сердечно-сосудистые заболевания
• ССС — сердечно-сосудистая система
• СССУ — синдром слабости синусового узла
• СТ — Синдром Туретта
• СТГ — соматотропный гормон
• СТР — стойкое (хроническое) моторное или вокальное тикозное расстройство
• сут — сутки
• СХУ — синдром хронической усталости
• т.д. — так далее
• т.е. — то есть
• т.к. — так как
• т.о. — таким образом
• т.п. — тому подобное
• Т3 — трийодтиронин
• Т4 — тироксин
• ТАНК — тест амплификации нуклеиновых кислот
• ТБС — тазобедренный сустав
• ТГВ — тромбоз глубоких вен
• ТГСК — трансплантация гемопоэтических стволовых клеток
• ТИА — транзиторная ишемическая атака
• ТИАБ — тонкоигольная аспирационная биопсия
• ТМО — твердая мозговая оболочка
• TH — торговое наименование лекарственных средств
• ТПГГ — территориальная программа государственных гарантий оказания гражданам РФ бесплатной медицинской помощи
• ТПМ — травматическое повреждение мозга
• ТТ — температура тела
• ТТГ — тиреотропный гормон
• ТФР — трансформирующий фактор роста
• ТЦА — трициклические антидепрессанты
• тыс. — тысяча
• ТЭД —транзиторная эритробластопения детского возраста
• ТЭЛА — тромбоэмболия легочной артерии
• ТЭО — тромбоэмболические осложнения
• УЗДС — ультразвуковое дуплексное сканирование
• УЗИ — ультразвуковое исследование
• устар. — устаревший
• УФ — ультрафиолетовый
• УФО — ультрафиолетовое облучение
• ФАП — фельдшерско-акушерский пункт
• ФВ — фракция выброса
• ФВД — функции внешнего дыхания
• ФЖ — фибрилляция желудочков
• ФЖЕЛ — форсированная жизненная емкость легких
• ФЗ — Федеральный закон
• физиол. — физиологический
• ФК — функциональный класс
• ФКС — фиброколоноскопия
• ФКУ — фенилкетонурия
• ФН — физическая нагрузка
• ФНО — фактор некроза опухоли
• ФОМС — федеральный фонд обязательного медицинского страхования
• ФОС — фосфорорганические соединения
• ФП — фибрилляция предсердий
• фр. — французский
• ФСГ — фолликулостимулирующий гормон
• ФСГС — фокально-сегментарный гломерулосклероз
• ФЭГДС — фиброэзофагогастродуоденоскопия
• ХБП — хроническая болезнь почек
• ХГЧ — хорионический гонадотропин человека
• ХДН — хроническая дыхательная недостаточность
• хим. — химический
• ХНЗЛ — хронические неспецифические заболевания легких
• ХОБЛ — хроническая обструктивная болезнь легких
• ХПН — хроническая почечная недостаточность
• ХС — холестерин
• ХСН — хроническая сердечная недостаточность
• XT — химиотерапия
• ЦВД — центральное венозное давление
• ЦБК — центральный венозный катетер
• ЦИК — циркулирующие иммунные комплексы
• ЦМВ — цитомегаловирус
• ЦНС — центральная нервная система
• ЦОГ — циклооксигеназа
• ЦПД — церебральное перфузионное давление
• ЦСТС — церебральный сольтеряющий синдром
• ч — час
• ЧД — частота дыхания
• ЧДД — частота дыхательных движений
• ЧКВ — чрескожное коронарное вмешательство
• ЧМН — черепно-мозговые нервы
• ЧМТ — черепно-мозговая травма
• ЧН — черепные нервы
• ЧС — чувствительность/специфичность (ЧС 97%/87%)
• ЧСС — частота сердечных сокращений
• ЧТВ — частичное тромбопластиновое время
• ШКГ — шкала комы Глазго
• ШОП — шейный отдел позвоночника
• ЩЖ — щитовидная железа
• ЩФ — щелочная фосфатаза
• ЭАР — эквивалент активности ретинола
• ЭГДС — эзофагогастродуоденоскопия
• ЭДТА — этилендиаминтетрауксусная кислота (этилендиаминтетраацетат)
• ЭКГ — электрокардиография
• ЭКМО — экстракорпоральная мембранная оксигенация
• ЭКО — экстракорпоральное оплодотворение
• ЭКС — электрокардиостимулятор, элекгрокардиостимуляция
• ЭМГ — электромиография
• ЭМК — электронная медицинская карта
• ЭМП — экстренная медицинская помощь
• ЭНМП — экстренная и неотложная медицинская помощь
• ЭНМТ — экстремально низкая масса тела
• ЭРХПГ —эндоскопическая ретроградная холангиопанкреатография
• ЭТ — эссенциальная тромбоцитемия
• ЭТТ — эндотрахеальная трубка
• ЭхоКГ — эхокардиография
• ЭЭГ — электроэнцефалография
• ЮДМ — ювенильный дерматомиозит
• ЮИА — ювенильный идиопатический артрит
• ЯБ — язвенная болезнь
• АА — амилоид A (amyloid А)
• ААР — Американская академия педиатрии (American Academy of Pediatrics)
• AASLD — Американская ассоциация по изучению заболеваний печени (American Association for the Study of Liver Diseases)
• ABC — алгоритм неотложной помощи «дыхательные пути-дыхание-кровообращение» (Airways-Breathing-Circulation)
• АВСАЗ — белковый член АТФ-связывающей кассеты АЗ
• АВСВ11 —ген АТФ-связывающей кассеты, 11-й член подсемейства В (ATP-binding cassette, subfamily В member 11)
• АВСВ4 — ген АТФ-связывающей кассеты, 4-й член подсемейства В (ATP-binding cassette 4 gene)
• АВСС2 — ген, кодирующий 2-й член подсемейства С АТФ-связывающих кассет (ATP-binding cassette sub-family С member 2)
• ABCDE — алгоритм неотложной помощи «дыхательные пути-дыхание-кровообращение-не-врологический статус-внешний вид» (Airways-Breathing-Circulation-Disability-Exposure)
• ABCG5/G8 — гетеродимер переносчика АТФ-связывающей кассеты ABCG5 и ABCG8 (heterodimer of ATP-binding cassette transporter ABCG5 and ABCG8)
• AC — до еды (при назначениях) — ante cibum
• АСЕР — Американская коллегия врачей неотложной помощи (American College of Emergency Physicians)
• ACOG — Американская коллегия акушеров и гинекологов (American College of Obstetricians and Gynecologists)
• AHA — Американская кардиологическая ассоциация (American Heart Association)
• ALTE — очевидное опасное для жизни событие (apparent life-threatening event)
• ANP — предсердный натрийуретический пептид (atrial natriuretic peptide)
• APLS — курсы расширенных реанимационных мероприятий в педиатрии, спонсируемые Американской академией педиатрии и Американской коллегией врачей неотложной помощи (Advanced Pediatric Life Support)
• ARPKD — аутосомно-рецессивный поликистоз почек ASCVD-риск — риск развития атеросклеротического сердечно-сосудистого заболевания (Arteriosclerotic Cardiovascular Disease)
• AVPU — шкала для оценки уровня сознания («в ясном сознании»; «реакция на вербальные раздражители»; «реакция на боль»; «без сознания») (alert, verbal, pain, unresponsive)
• BCS — митохондриальный шаперон BCS1 (mitochondrial chaperone BCS1)
• BIN — биноминальная номенклатура живой природы
• B(i)PAP — режим искусственной вентиляции легких с двумя уровнями положительного давления (bilevel positive airway pressure)
• BNP — мозговой натрийуретический пептид В-типа [В (brain)-type natriuretic peptide]
• BRUE — быстро разрешившиеся необъяснимые события (brief resolved unexplained events)
• BSEP — насос выведения солей желчных кислот (bile salt export pump)
• CADASIL — церебральная аутосомно-доминантная артериопатия с подкорковыми инфарктами и лейкоэнцефалопатией (cerebral autosomal dominant arteriopathy with subcortical infarcts and leukoencephalopathy)
• CAPS — криопирин-ассоциированный периодический синдром (cryopyrin-associated periodic syndrome)
• CBIT — комплексное поведенческое воздействие при тиках (comprehensive behavioral intervention for tics)
• CD — кластеры дифференцировки (clusters of differentiation)
• CDC — Центр по контролю и профилактике заболеваний, США (Center for Disease Control and Prevention)
• CDG — врожденные нарушения гликозилирования (congenital disorder of glycosylation)
• CFTR — трансмембранный регулятор муковисцидоза (cystic fi brosis transmembrane regulator)
• CH — гемолитический комплемент (hemolytic complement)
• CLLS — шкала оценки острой горной болезни озера Луиз у детей (Children’s Lake Louise Score)
• сМОАТ — каналикулярный мультиспецифический органический анионный транспортер (canalicular multispecific organic anion transporter)
• CMT — Шарко-Мари-Тута болезнь (Charcot-Marie-Tooth disease)
• CPAP — постоянное положительное давление в дыхательных путях (constant positive airway pressure)
• CTLA — цитотоксический Т-лимфоцитарный антиген (cytotoxic T-lymphocytic antigen)
• CYP — цитохром общий
• DAF — фактор ускорения распада (decay-accelerating factor)
• DAMP — рецепторы молекулярного фрагмента, ассоциированного с повреждением (damage-associated molecular pattern)
• DASH — диетические подходы к борьбе с гипертонией (dietary approaches to stop hypertension)
• DGAT1 — диацилглицерин-1-ацилтрансфераза (diacylglycerol acyltransferase 1)
• DHR — дигидрородамин (dihydrorhodamine)
• DSM — Диагностическое и статистическое руководство по психическим расстройствам (Diagnostic and Statistical Manual of Mental Disorders)
• EAST syndrome — эпилепсия, атаксия, сенсоневральная тугоухость и тубулопатия (epilepsy, ataxia, sensorineural hearing loss, and tubulopath)
• EBM — доказательная медицина (evidance based medicine)
• EPCAM — молекула адгезии эпителиальных клеток (epithelial cell adhesion molecule)
• ESC — Европейское общество кардиологии (European Society of Cardiology)
• EXIT — лечение плода вне матки во время родов (ех utero intrapartum treatment)
• FcRs — Fc-рецепторы — белок, расположенный на поверхности нескольких видов клеток иммунной системы (естественных киллеров, макрофагов, нейтрофилов и тучных клеток) FDA — Комитет по контролю за лекарственными веществами и пищевыми добавками, США (Food and Drug Administration)
• FFR — фракционный резерв кровотока (fractional flow reserve)
• FGF-23 — фактор роста фибробластов-23 (fibroblast growth factor-23)
• FIC 1 —семейный внутрипеченочный холестаз 1-го типа, болезнь Байлера (familial intrahepatic cholestasis)
• FiO₂ — фракция кислорода (во вдыхаемом воздухе, газовой смеси)
• FISH — флуоресцентная in situ гибридизация (fluorescence in situ hybridization)
• FLAIR — восстановление инверсии с ослаблением жидкости (fluid-attenuated inversion recovery)
• FMF — семейная средиземноморская лихорадка (familial mediterranean fever)
• FODMAP — ферментируемые олиго-, ди-, моносахариды и полиолы (fermentable oligo-, di-, monosaccharides and polyols)
• FoxP3 —транскрипционный фактор семейства Forkhead Р3
• GATA — gata-связывающий белок
• DVL — трансплантат против лейкоза (graft versus leukemia)
• HADH — гидроксилацил-КоА-дегидрогеназа (Hydroxyacyl-Coenzyme A dehydrogenase)
• HAV — вирус гепатита В (hepatitis A virus)
• Hb — гемоглобин
• HBcAg — сердцевинный антиген вируса гепатита В HBeAg — антиген вируса гепатита В
• HBsAg — поверхностный антиген вируса гепатита В
• HBV — вирус гепатита В (hepatitis В virus)
• HCV — вирус гепатита С (hepatitis С virus)
• HDV — вирус гепатита D (hepatitis D virus)
• HELLP — HELLP-синдром (гемолиз, повышенный уровень печеночных ферментов, низкий уровень тромбоцитов) (hemolysis, elevated liver enzymes, low platelets)
• HEV — вирус гепатита E (hepatitis E virus)
• HFNC — назальные канюли высокого потока (heated, high-flow nasal cannula)
• Hib — гемофильная палочка типа В (Haemophilus influenzae В type)
• HLA — лейкоцитарные антигены (главного комплекса гистосовместимости) человека (human leukocyte antigens)
• HR — отношение рисков (hazard ratio)
• HRT — терапия отмены привычки (habit reversal therapy)
• Ht — гематокрит
• HTLV — Т-лимфотропный вирус человека (human T-lymphotropic virus)
• IFN — интерферон
• Ig — иммуноглобулин
• IgA — иммуноглобулин A
• IgE — иммуноглобулин E
• IgG — иммуноглобулин G
• IgM — иммуноглобулин M
• IL — интерлейкин
• IPEX — Х-сцепленный синдром иммунной дисрегуляции, полиэндокринопатии и энтеропатии (immunedysregulation polyendocrinopathy enteropathy, X-linked)
• IQ — коэффициент умственного развития (intelligence quotient)
• JAK — янус-киназа (janus kinase)
• LFA — антиген, активирующий функцию лейкоцитов (lymphocyte function-associated antigen)
• LT — лейкотриен
• MALT — лимфоидная ткань слизистой оболочки (mucosa-associated lymphoid tissue)
• MASP — МСЛ-ассоциированная сериновая протеаза (MBL-associated serine protease)
• MBL — маннозосвязывающий лектин (mannose-binding lectin)
• MCP — мембранный белок-кофактор (membrane cofactor protein)
• MDR3 — белок множественной лекарственной устойчивости 3 (multidrug resistance protein 3)
• MELAS — митохондриальная энцефалопатия, лактоацидоз и инсультоподобные эпизоды (mitochondrial encephalomyopathy, lactic acidosis, and stroke-like episodes)
• MELD — модель для оценки терминальной стадии заболеваний печени, предназначена для оценки относительной тяжести заболевания и прогноза жизни у пациентов с терминальной стадией печеночной недостаточности (ожидающих трансплантации печени) (model for end-stage liver disease)
• MERRF — миоклоническая эпилепсия с рваными красными волокнами (myoclonic epilepsy with ragged red fibers)
• MHC — главный комплекс гистосовместимости (major histocompatibility complex)
• Mr — кажущаяся молекулярная масса
• MRP — белок с множественной лекарственной устойчивостью (multidrug-resistant protein)
• MRSA — метициллинрезистентный золотистый стафилококк
• MSSA — метициллинчувствительный золотистый стафилококк
• mTOR — мишень рапамицина у млекопитающих (mammalian target of rapamycin)
• NB! — важно, обратить внимание (nota bene)
• NICE — Национальный институт здоровья и клинического совершенствования (качества медицинской помощи) Великобритании (National Institute for Health and Clinical Excellence)
• NK — естественные клетки-киллеры (natural killer) NMDA — И-метил-В-аспартат (N-methyl-D-aspartate)
• NNT — число больных, которых необходимо пролечить, чтобы достичь какого-то указанного эффекта (number need to treatment)
• OR — отношение шансов (odds ratio)
• paCO₂ — парциальное давление углекислого газа в артериальной крови
• PALS — курсы расширенных реанимационных мероприятий в педиатрии (Pediatric Advanced Life Support)
• PANDAS — аутоиммунное нейропсихиатрическое расстройство в детском возрасте, ассоциированное со стрептококковой инфекцией (pediatric autoimmune neuropsychiatric disorder associated with streptococcal infection)
• PANS — острый нейропсихиатрический синдром в детском возрасте (pediatric acute-onset neuropsychiatric syndrome)
• paO₂ — парциальное давление кислорода в артериальной крови
• PAS — фуксинсернистая кислота, реактив Шиффа (periodic acid-Shiff)
• PC — после еды (при назначениях) (post cibum) рСО₂ — парциальное давление углекислого газа
• PCSK-9 — пропротеиновая конвертаза субтилизинкексинового типа 9 (proprotein convertase subtilisin/kexin type 9)
• PFAPA — периодическая лихорадка с афтозным стоматитом, фарингитом и лимфаденитом (periodic fevers with aphthous stomatitis, pharyngitis and adenitis)
• PFIC — семейный внутрипеченочный холестаз (familial intrahepatic cholestasis)
• Pg — простагландин
• pH — водородный показатель
• PIM — показатель летального исхода у детей (pediatric index of mortality)
• piO₂ — парциальное давление кислорода во вдыхаемом воздухе
• рО₂ — парциальное давление кислорода
• POLG — субъединица ДНК-полимеразы γ
• PRISA II — оценка риска госпитализации у детей II (pediatric risk of admission)
• PRISM — риск летального исхода у детей (pediatric risk of mortality)
• PRN — при (по) необходимости (pro re nata — при возникновении обстоятельств)
• PRSS — ген сериновой протеазы
• PS — примечание (post scriptum)
• PUVA-терапия — псорален-ультрафиолет А-терапия (psoralen and ultraviolet А)
• Q#H — каждые # часов (при назначениях) (quaque... hora)
• QAM — каждое утро (при назначениях) (quaque ante meridiem)
• QPM — каждый вечер (при назначениях) (quaque post meridiem)
• RAG — ген, активирующий рекомбиназу
• RePEAT — пересмотренный инструмент для оценки педиатрической неотложной медицинской помощи (Revised Pediatric Emergency Assessment Tool)
• RF — ревматоидный фактор
• Rh — резус(-фактор)
• Rh«-» — резус-отрицательн(ый)
• Rh«+» — резус-положительн(ый)
• ROHHAD — быстро развивающееся ожирение с дисфункцией гипоталамуса, гиповентиляцией и спонтанной дисрегуляцией (rapid-onset obesity with hypothalamic dysfunction, hypoventilation and autonomic dysregulation)
• ROMK — почечный наружный мозговой калиевый канал (renal outer medullary К)
• RR — относительный риск (relative risk или risk ratio)
• RW — реакция Вассермана (reaction of Wassermann)
• SaO₂ — сатурация артериальной крови кислородом
• SatO₂ — насыщение крови кислородом
• ScvO₂ — насыщение кислородом центральной венозной крови (central venous oxygen saturation)
• SD — стандартное отклонение (standart deviation)
• SFTPA — ген сурфактантного белка A
• SFTPB — ген сурфактантного белка В
• SFTPC — ген сурфактантного белка С
• SPINK — ингибитор сериновой протеазы (serine protease inhibitor kazal)
• SpO₂ — насыщение (сатурация) гемоглобина кислородом
• spp. — виды (при родовом имени микроорганизмов)
• Src. — источник информации, библиографическая ссылка (source)
• STAT1 — сигнальный преобразователь и активатор транскрипции 1 (signal transducer and activator of transcription)
• TA — Международная анатомическая терминология
• TCR — Т-клеточный рецептор (T-cell receptor)
• TIPS —трансъюгулярный внутрипеченочный портосистемный шунт; малоинвазивная хирургическая операция, проводимая под контролем рентгеноскопии (transjugular intrahepatic portosystemic shunt)
• TLR — Толл-подобный рецептор (Toll-like receptor)
• TNF — фактор некроза опухоли (tumor necrosis factor)
• TORCH — токсоплазмоз, краснуха, цитомегаловирусная инфекция, герпес и другие инфекции (toxoplasmosis, other infections, rubella, cytomegalovirus herpes simplex)
• TPM — мутация тропомиозина (mutation of the tropomyosin)
• TRAP — синдром обратной артериальной перфузии близнецов (twin reversed arterial perfusion)
• TRAPS — периодический синдром, ассоциированный с рецептором фактора некроза опухоли (tumor necrosis factor receptor-associated periodic syndrome)
• TRPM — катионный канал с транзиторным рецепторным потенциалом, подсемейство М (transient receptor potential cation channel, subfamily M)
• VEGF — фактор роста эндотелия сосудов (vascular endothelial growth factor)
• VO₂ — потребление кислорода
• WPW — синдром Вольфа-Паркинсона-Уайта (Wolff-Parkinson-White)
• XLA — Х-сцепленная агаммаглобулинемия (X-linked agammaglobulinemia)
• αDG-RD — дистрофии, связанные с α-дистрогликанами (alpha dystroglycan-related dystrophies)
• β-ХГЧ — β-субъединица хорионического гонадотропина человека

В ходе подготовки статей по гематологическим заболеваниям в терапии для пользователей сайта МедУнивер использованы труды следующих авторов:

1. 1. Campbell TW. Evaluation of the blood film. Clin Lab Med. 2015; 35: 703–721.
2. Simson E, McFadden S, Barnes P, et al. The International Consensus Group for Hematology Review. Consensus guidelines: preface. http://www.islh.org/web/consensus_rules.php. Accessed: March 7, 2019.
3. Comar SR, Malvezzi M, Pasquini R. Evaluation of criteria of manual blood smear review following automated complete blood counts in a large university hospital. Rev Bras Hematol Hemoter. 2017; 39: 306–317.
4. de Silva NL, Sivayoganathan S, Sivashangar A, et al. Can findings on peripheral blood smear differentiate leptospirosis from other infections? A preliminary comparative study. Trans R Soc Trop Med Hyg. 2018; 112: 94–96.
5. Ullah I, Ali MU, Ali S, et al. Hematological profile of patients having malaria-positive peripheral blood smears: a cross-sectional study at a diagnostic research center in Khyber Pakhtunkhwa, Pakistan. Cureus. 2018; 10: 1–12.
6. Miller CE, Bain BJ. The utility of blood and bone marrow films and trephine biopsy sections in the diagnosis of parasitic infections. Mediterr J Hematol Infect Dis. 2015; 7: 1–9.
7. Fumi M, Pancione Y, Sale S, et al. Botryoid nuclei resulting from cocaine abuse. Am J Hematol. 2017; 92: 1260–1261.
8. Bain BJ, Chakravorty S. Phytosterolemia. Am J Hematol. 2016; 91: 643.
9. Bain BJ. Diagnosis of follicular lymphoma from the peripheral blood. Am J Hematol. 2018. [Epub ahead of print.]
10. Haninger DM, Nassiri M, Settembre ED, et al. Live remote digital microscopy in peripheral blood smear evaluation: Intraobserver concordance and experience. Int J Lab Hematol. 2018; 40: 740–746.
11. Palur K, Arakeri SU. Effectiveness ofthe International Consensus Group criteria for manual peripheral smear review. Indian J Pathol Microbiol. 2018; 61: 360–365.
12. Bain BJ, Varu V, Rowley M, et al. Mechanical hemolysis: a low mean cell volume does not always represent microcytosis. Am J Hematol. 2015; 90: 1179.
13. Barros Pinto MP, Marques G. MYH9 disorders (May-Hegglin anomaly) the role of the blood smear. J Pediatr Hematol Oncol. 2019. [Epub ahead of print.]
14. Siow W, Bain BJ. Can we have some platelets please? A reason not to put your microscope on eBay. Am J Hematol. 2017; 92: 583.
15. Bain BJ, Ahmad S. Chronic neutrophilic leukaemia and plasma cell-related neutrophilic leukaemoid reactions. Br J Haematol. 2015; 171: 400–410.
16. Palmer SC, Saglimbene V, Mavridis D, et al. Erythropoiesis-stimulating agents for anaemia in adults with chronic kidney disease: a network meta-analysis. Cochrane Database Syst Rev. 2014; 12: CD010590.
17. Obeid R, Schon C, Wilhelm M, et al. The effectiveness of daily supplementation with 400 or 800 microg/day folate in reaching protective red blood folate concentrations in non-pregnant women: a randomized trial. Eur J Nutr. 2018; 57: 1771–1780.
18. Silver AJ, Jaiswal S. Clonal hematopoiesis: pre-cancer PLUS. Adv Cancer Res. 2019; 141: 85–128.
19. Jaiswal S, Natarajan P, Silver AJ, et al. Clonal hematopoiesis and risk of atherosclerotic cardiovascular disease. N Engl J Med. 2017; 377: 111–121.
20. Steensma DP, Bejar R, Jaiswal S, et al. Clonal hematopoiesis of indeterminate potential and its distinction from myelodysplastic syndromes. Blood. 2015; 126: 9–16.
21. McQuilten ZK, Crighton G, Brunskill S, et al. Optimal dose, timing and ratio of blood products in massive transfusion: results from a systematic review. Transfus Med Rev. 2018; 32: 6–15.
22. Takahashi N, Kameoka J, Takahashi N, et al. Causes of macrocytic anemia among 628 patients: mean corpuscular volumes of 114 and 130 fL as critical markers for categorization. Int J Hematol. 2016; 104: 344–357.
23. Weiss G, Ganz T, Goodnough LT. Anemia of inflammation. Blood. 2019; 133: 40–50.
24. Ganz T, Nemeth E. Iron balance and the role of hepcidin in chronic kidney disease. Semin Nephrol. 2016; 36: 87–93.
25. Ribeiro S, Belo L, Reis F, Santos-Silva A. Iron therapy in chronic kidney disease: recent changes, benefits and risks. Blood Rev. 2016; 30: 65–72.
26. Rukuni R, Knight M, Murphy MF, et al. Screening for iron deficiency and iron deficiency anaemia in pregnancy: a structured review and gap analysis against UK national screening criteria. BMC Pregnancy Childbirth. 2015; 15: 1–11.
27. Stauder R, Valent P, Theurl I. Anemia at older age: etiologies, clinical implications, and management. Blood. 2018; 131: 505–514.
28. GBD 2015 Disease and Injury Incidence and Prevalence Collaborators. Global, regional, and national incidence, prevalence, and years lived with disability for 310 diseases and injuries, 1990-2015: a systematic analysis for the Global Burden of Disease Study 2015. Lancet. 2016;388:1545-1602.
29. Muckenthaler MU, Rivella S, Hentze MW, et al. A red carpet for iron metabolism. Cell. 2017;168: 344-361.
30. Camaschella C. Iron-deficiency anemia. N Engl J Med. 2015;372:1832-1843.
31. Lopez A, Cacoub P, Macdougall IC, et al. Iron deficiency anaemia. Lancet. 2016;387:907-916.
32. Camaschella C. Iron deficiency. Blood. 2019;133:30-39.
33. DeLoughery TG. Iron deficiency anemia. Med Clin North Am. 2017;101:319-332.
34. Anker SD, Kirwan BA, van Veldhuisen DJ, et al. Effects of ferric carboxymaltose on hospitalisations and mortality rates in iron-deficient heart failure patients: an individual patient data meta-analysis. Eur J Heart Fail. 2018;20:125-133.
35. Archer NM, Brugnara C. Diagnosis of iron-deficient states. Crit Rev Clin Lab Sci. 2015;52: 256-272.
36. Peyrin-Biroulet L, Williet N, Cacoub P. Guidelines on the diagnosis and treatment of iron deficiency across indications: a systematic review. Am J Clin Nutr. 2015;102:1585-1594.
37. Moretti D, Goede JS, Zeder C, et al. Oral iron supplements increase hepcidin and decrease iron absorption from daily or twice-daily doses in iron-depleted young women. Blood. 2015;126:1981-1989.
38. Auerbach M, Deloughery T. Single-dose intravenous iron for iron deficiency: a new paradigm. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2016;2016:57-66.
39. Girelli D, Ugolini S, Busti F, et al. Modern iron replacement therapy: clinical and pathophysiological insights. Int J Hematol. 2018;107:16-30.
40. Macdougall IC. Intravenous iron therapy in patients with chronic kidney disease: recent evidence and future directions. Clin Kidney J. 2017;10(suppl 1):i16-i24.
41. Musoz M, Acheson AG, Auerbach M, et al. International consensus statement on the peri-operative management of anaemia and iron deficiency. Anaesthesia. 2017;72:233-247.
42. Donker AE, Schaap CC, Novotny VM, et al. Iron refractory iron deficiency anemia: a heterogeneous disease that is not always iron refractory. Am J Hematol. 2016;91:E482-E490.
43. Weiss G, Ganz T, Goodnough LT. Anemia of inflammation. Blood. 2019;133:40-50.
44. Wang CW, Babitt JL. Hepcidin regulation in the anemia of inflammation. Curr Opin Hematol. 2016;23:189-197.
45. Ganz T, Nemeth E. Iron homeostasis in host defence and inflammation. Nat Rev Immunol. 2015;15:500-510.
46. Nielsen OH, Ainsworth M, Coskun M, et al. Management of iron-deficiency anemia in inflammatory bowel disease: a systematic review. Medicine (Baltimore). 2015;94:1-14.
47. Berentsen S, Randen U, Vagan AM, et al. High response rate and durable remissions following fluda- rabine and rituximab combination therapy for chronic cold agglutinin disease. Blood. 2010; 116: 3180–3184.
48. Berentsen S, Randen U, Oksman M, et al. Bendamustine plus rituximab for chronic cold agglutinin disease: results of a Nordic prospective multicenter trial. Blood. 2017; 130: 537–554.
49. Birgens H, Frederiksen H, Hasselbalch HC, et al. A phase III randomized trial comparing glucocorticoid monotherapy versus glucocorticoid and rituximab in patients with autoimmune haemolytic anaemia. Br J Haematol. 2013; 163: 393–399.
50. Michel M, Terriou L, Roudot-Thoraval F, et al. A randomized and double-blind controlled trial evaluating the safety and efficacy of Rituximab for warm auto-immune hemolytic anemia in adults (the RAIHA study). Am J Hematol. 2017; 92: 23–27.
51. Marti-Carvajal AJ, Anand V, Cardona AF, et al. Eculizumab for treating patients with paroxysmal nocturnal hemoglobinuria. Cochrane Database Syst Rev. 2014; CD010340.
52. Lee JW, Sicre de Fontbrune F, Wong Lee Lee L, et al. Ravulizumab (ALXN1210) vs eculizumab in adult patients with PNH naive to complement inhibitors: the 301 study. Blood. 2019; 133: 530–539.
53. Liebman HA, Weitz IC. Autoimmune hemolytic anemia. Med Clin North Am. 2017; 101: 351–359.
54. Berentsen S. How I manage patients with cold agglutinin disease. Br J Haematol. 2018; 181: 320–330.
55. Parker V, Tormey CA. The direct antiglobulin test: indications, interpretation, and pitfalls. Arch Pathol Lab Med. 2017; 141: 305–310.
56. Hill A, Hill QA. Autoimmune hemolytic anemia. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2018; 2018: 382–389.
57. Leaf RK, Ferreri C, Rangachari D, et al. Clinical and laboratory features of autoimmune hemolytic anemia associated with immune checkpoint inhibitors. Am J Hematol. 2019. [Epub ahead of print.]
58. Hill QA, Stamps R, Massey E, et al. Guidelines on the management of drug-induced immune and secondary autoimmune, haemolytic anaemia. Br J Haematol. 2017; 177: 208–220.
59. Go RS, Winters JL, Kay NE. How I treat autoimmune hemolytic anemia. Blood. 2017; 129: 2971–2979.
60. Serris A, Amoura Z, Canoui-Poitrine F, et al. Efficacy and safety of rituximab for systemic lupus erythematosus-associated immune cytopenias: a multicenter retrospective cohort study of 71 adults. Am J Hematol. 2018; 93: 424–429.
61. Hill A, DeZern AE, Kinoshita T, et al. Paroxysmal nocturnal haemoglobinuria. Nat Rev Dis Primers. 2017; 3: 1–14.
62. Wong EKS, Kavanagh D. Diseases of complement dysregulation—an overview. Semin Immunopathol. 2018; 40: 49–64.
63. Gnanaraj J, Parnes A, Francis CW, et al. Approach to pancytopenia: diagnostic algorithm for clinical hematologists. Blood Rev. 2018; 32: 361–367.
64. England JT, Dalal B, Leitch HA. Frequency of and reasons for paroxysmal nocturnal haemoglobinuria screening in patients with unexplained anaemia. J Clin Pathol. 2018; 71: 364–367.
65. Keeney M, Illingworth A, Sutherland DR. Paroxsymal nocturnal hemoglobinuria assessment by flow cytometric analysis. Clin Lab Med. 2017; 37: 855–867.
66. Roth A, Maciejewski J, Nishimura JI, et al. Screening and diagnostic clinical algorithm for paroxysmal nocturnal hemoglobinuria: expert consensus. Eur J Haematol. 2018; 101: 3–11.
67. Oldaker T, Whitby L, Saber M, et al. ICCS/ESCCA consensus guidelines to detect GPI-deficient calls in paroxysmal nocturnal hemoglobinuria (PNH) and related disorders part 4 — assay validation and quality assurance. Cytometry B Clin Cytom. 2018; 94: 67–81.
68. Lux SE 4th. Anatomy of the red cell membrane skeleton: unanswered questions. Blood. 2016; 127: 187–199.
69. Narla J, Mohandas N. Red cell membrane disorders. Int J Lab Hematol. 2017; 39 (S1): 47–52.
70. Russo AI, Gambale A, Iolascon A. New insights on hereditary erythrocyte membrane defects. Hae- matologica. 2016; 101: 1284–1294.
71. Haley K. Congenital hemolytic anemia. Med Clin North Am. 2017; 101: 361–374.
72. King MJ, Garcon L, Hoyer JD, et al. ICSH guidelines for the laboratory diagnosis of nonimmune hereditary red cell membrane disorders. Int J Lab Hematol. 2015; 37: 304–325.
73. Cheli E, Roze J, Daouairi N, et al. Value of combined spherocytose osmotic and EMA tests in the diagnosis of hereditary spherocytosis. Int J Lab Hematol. 2019. [Epub ahead of print.]
74. Agarwal AM, Nussenzveig RH, Reading NS, et al. Clinical utility of next-generation sequencing in the diagnosis of hereditary haemolytic anaemias. Br J Haematol. 2016; 174: 806–814.
75. Iolascon A, Andolfo I, Barcellini W, et al. Recommendations for splenectomy in hereditary hemolytic anemias. Haematologica. 2017; 102: 1304–1313.
76. Englum BR, Rothman J, Leonard S, et al. Hematologic outcomes after total splenectomy and partial splenectomy for congenital hemolytic anemia. J Pediatr Surg. 2016; 51: 122–127.
77. Glogowska E, Gallagher PG. Disorders of erythrocyte volume homeostasis. Int J Lab Hematol. 2015; 37 (S1): 85–91.
78. Grace RF, Bianchi P, van Beers EJ, et al. Clinical spectrum of pyruvate kinase deficiency: data from the Pyruvate Kinase Deficiency Natural History Study. Blood. 2018; 131: 2183–2192.
79. Grace RF, Mark Layton D, Barcellini W. How we manage patients with pyruvate kinase deficiency. Br J Haematol. 2019; 184: 721–734.
80. Luzzatto L, Nannelli C, Notaro R. Glucose-6-phosphate dehydrogenase deficiency. Hematol Oncol Clin North Am. 2016; 30: 373–393.
81. Mbanefo EC, Ahmed AM, Titouna A, et al. Association of glucose-6-phosphate dehydrogenase deficiency and malaria: a systematic review and meta-analysis. Sci Rep. 2017; 7: 1–10.
82. Gomez-Manzo S, Marcial-Quino J, Vanoye-Carlo A, et al. Glucose-6-phosphate dehydrogenase: update and analysis of new mutations around the world. Int J Mol Sci. 2016; 17: 1–15.
83. La Vieille S, Lefebvre DE, Khalid AF, et al. Dietary restrictions for people with glucose-6-phosphate dehydrogenase deficiency. Nutr Rev. 2019; 77: 96–106.
84. Fisher SA, Brunskill SJ, Doree C, et al. Desferrioxamine mesylate for managing transfusional iron overload in people with transfusion-dependent thalassaemia. Cochrane Database Syst Rev. 2013; 8: CD004450.
85. Fisher SA, Brunskill SJ, Doree C, et al. Oral deferiprone for iron chelation in people with thalassaemia. Cochrane Database Syst Rev. 2013; 8: CD004839.
86. Taher AT, Porter J, Viprakasit V, et al. Deferasirox reduces iron overload significantly in nontransfusiondependent thalassemia: 1-year results from a prospective, randomized, double-blind, placebo-controlled study. Blood. 2012; 120: 970–977.
87. Dou H, Qin Y, Chen G, et al. Effectiveness and safety of deferasirox in thalassemia with iron overload: a meta-analysis. Acta Haematol. 2019; 141: 32–42.
88. Sadaf A, Hasan B, DasJK, et al. Calcium channel blockers for preventing cardiomyopathy due to iron overload in people with transfusion-dependent beta thalassaemia. Cochrane Database Syst Rev. 2018; 7: CD011626.
89. Eghbali A, Khalilpour A, Taherahmadi H, et al. Pantoprazole reduces serum ferritin in patients with thalassemia major and intermedia: a randomized, controlled study. Therapie. 2019. [Epub ahead of print.]
90. Taher AT, Weatherall DJ, Cappellini MD. Thalassaemia. Lancet. 2018; 391: 155–167.
91. Mettananda S, Higgs DR. Molecular basis and genetic modifiers of thalassemia. Hematol Oncol Clin North Am. 2018; 32: 177–191.
92. Antoniani C, Meneghini V, Lattanzi A, et al. Induction of fetal hemoglobin synthesis by CRISPR/ Cas9-mediated editing of the human в-globin locus. Blood. 2018; 131: 1960–1973.
93. Taher AT, Weatherall DJ, Cappellini MD. Thalassaemia. Lancet. 2018; 391: 155–167.
94. Sleiman J, Tarhini A, Bou-Fakhredin R, et al. Non-transfusion-dependent thalassemia: an update on complications and management. Int J Mol Sci. 2018; 19: 1–6.
95. Origa R. ?-Thalassemia. Genet Med. 2017; 19: 609–619.
96. Wong P, Fuller PJ, Gillespie MT, Milat F. Bone disease in thalassemia: a molecular and clinical overview. Endocr Rev. 2016; 37: 320–346.
97. Pepe A, Gamberini MR, Missere M, et al. Gender differences in the development of cardiac complications: a multicenter study of a large cohort of thalassaemia major patients to optimize the timing of cardiac follow-up. Br J Haematol. 2018; 180: 879–888.
98. Ansari S, Rashid N, Hanifa A, et al. Laboratory diagnosis for thalassemia intermedia: are we there yet? J Clin Lab Anal. 2019; 33: 1–8.
99. Trinchero A, Marchetti M, Giaccherini C, et al. Platelet haemostatic properties in ?-thalassaemia: the effect of blood transfusion. Blood Transfus. 2017; 15: 413–421.
100. Cassinerio E, Baldini IM, Alameddine RS, et al. Pregnancy in patients with thalassemia major: a cohort study and conclusions for an adequate management approach. Ann Hematol. 2017; 96: 1015–1021.
101. Viprakasit V Ekwattanakit S. Clinical classification, screening and diagnosis for thalassemia. Hematol Oncol Clin North Am. 2018; 32: 193–211.
102. Jones E, Pasricha SR, Allen A, et al. Hepcidin is suppressed by erythropoiesis in hemoglobin E ?-thalassemia and ?-thalassemia trait. Blood. 2015; 125: 873–880.
103. Vichinsky E. Non-transfusion-dependent thalassemia and thalassemia intermedia: epidemiology, complications, and management. Curr Med Res Opin. 2016; 32: 191–204.
104. Iolascon A, Andolfo I, Barcellini W, et al. Recommendations regarding splenectomy in hereditary hemolytic anemias. Haematologica. 2017; 102: 1304–1313.
105. Taher A, Musallam K, Cappellini MD. Guidelines for the management of non transfusion dependent thalassaemia (NTDT) 2nd edition. 2017. https://thalassaemia.org.cy/publications/tif-publications/guidelines-for-the-clinical-management-of-non-transfusion-dependent-thalassaemias-updated-version/ (Accessed March 7, 2019).
106. Strocchio L, Locatelli F. Hematopoietic stem cell transplantation in thalassemia. Hematol Oncol Clin North Am. 2018; 32: 317–328.
107. Cappellini MD, Porter J, Origa R, et al. Sotatercept, a novel transforming growth factor в ligand trap, improves anemia in в-thalassemia: a phase II, open-label, dose-finding study. Haematologica. 2019; 104: 477–484.
108. Ware RE, Helms RW, the SWiTCH Investigators. Stroke with transfusions changing to hydroxyurea (SWiTCH). Blood. 2012; 119: 3925–3932.
109. DeBaun MR, Gordon M, McKinstry RC, et al. Controlled trial of transfusions for silent cerebral infarcts in sickle cell anemia. N Engl J Med. 2014; 371: 699–710.
110. Ware RE, Davis BR, Schultz WH, et al. Hydroxycarbamide versus chronic transfusion for maintenance of transcranial Doppler flow velocities in children with sickle cell anaemia — TCD with transfusions changing to hydroxyurea (TWiTCH): a multicentre, open-label, phase 3, non-inferiority trial. Lancet. 2016; 387: 661–670.
111. Howard J, Malfroy M, Llewelyn C, et al. The Transfusion Alternatives Preoperatively in Sickle Cell Disease (TAPS) study: a randomised, controlled, multicentre clinical trial. Lancet. 2013; 381: 930–938.
112. Estcourt LJ, Fortin PM, Trivella M, et al. Preoperative blood transfusions for sickle cell disease. Cochrane Database Syst Rev. 2016; 4: CD003149.
113. Ataga KI, Kutlar A, Kanter J, et al. Crizanlizumab for the prevention of pain crises in sickle cell disease. N Engl J Med. 2017; 376: 429–439.
114. Heeney MM, Hoppe CC, Abboud MR, et al. A multinational trial of prasugrel for sickle cell vasoocclusive events. N Engl J Med. 2016; 374: 625–635.
115. Niihara Y, Miller ST, Kanter J, et al. A phase 3 trial of l-glutamine in sickle cell disease. N Engl J Med. 2018; 379: 226–235.
116. Kato GJ, Piel FB, Reid CD, et al. Sickle cell disease. Nat Rev Dis Primers. 2018; 4: 1–22.
117. Sundd P, Gladwin MT, Novelli EM. Pathophysiology of sickle cell disease. Annu Rev Pathol. 2019; 14: 263–292.
118. Kotila TR. Sickle cell trait: a benign state? Acta Haematol. 2016; 136: 147–151.
119. Singer DE, Byrne C, Chen L, et al. Risk of exertional health illnesses associated with sickle cell trait in U.S. military. Mil Med. 2018; 183: e310–e317.
120. Lampert R, Zipes DP. Updated recommendations for athletes with heart disease. Annu Rev Med. 2018; 69: 177–189.
121. Naik RP, Smith-Whitley K, Hassell KL, et al. Clinical outcomes associated with sickle cell trait: a systematic review. Ann Intern Med. 2018; 169: 619–627.
122. Thein MS, Igbineweka NE, Thein SL. Sickle cell disease in the older adult. Pathology. 2017; 49: 1–9.
123. Kozanoglu I, Ozdogu H. Use of red blood cell exchange for treating acute complications of sickle cell disease. Tranfus Apher Sci. 2018; 57: 23–26.
124. Adams RJ, Cox M, Ozark SD, et al. Coexistent sickle cell disease has no impact on the safety or outcome of lytic therapy in acute ischemic stroke. Stroke. 2017; 48: 686–691.
125. Kassim AA, Pruthi S, Day M, et al. Silent cerebral infarcts and cerebral aneurysms are prevalent in adults with sickle cell anemia. Blood. 2016; 127: 2038–2040.
126. Howard J, Hart N, Roberts-Harewood M, et al. Guideline on the management of acute chest syndrome in sickle cell disease. Br J Haematol. 2015; 169: 492–505.
127. Airy M, Eknoyan G. The kidney in sickle hemoglobinopathies. Clin Nephrol. 2017; 87: 55–68.
128. Oligbu G, Collins S, Sheppard C, et al. Risk of invasive pneumococcal disease in children with sickle cell disease in England: a National Observational Cohort Study, 2010-2015. Arch Dis Child. 2017; 103: 643–647.
129. Malinowski AK, Shehata N, D’Souza R, et al. Prophylactic transfusion for pregnant women with sickle cell disease: a systematic review and meta-analysis. Blood. 2015; 126: 2424–2435.
130. Lu PQ, Gulbis B, Dedeken L, et al. Survival among children and adults with sickle cell disease in Belgium: benefit from hydroxyurea treatment. Pediatr Blood Cancer. 2015; 62: 1956–1961.
131. Qureshi A, Kaya B, Pancham S, et al; On behalf of the British Society of Haematology. Guidelines for the use of hydroxycarbamide in children and adults with sickle cell disease: a British Society for Haematology Guideline. Br J Haematol. 2018; 181: 460–475.
132. Davis BA, Allard S, Qureshi A, et al; the British Committee for Standards in Haematology. Guidelines on red cell transfusion in sickle cell disease. Part I: principles and laboratory aspects. Br J Haematol. 2017; 176: 179–191.
133. Davis BA, Allard S, Qureshi A, et al; on behalf of the British Society for Haematology. Guidelines on red cell transfusion in sickle cell disease part II: indications for transfusion. Br J Haematol. 2017; 176: 192–209.
134. Labranche R, Gilbert G, Cerny M, et al. Liver iron quantification with MR imaging: a primer for radiologists. Radiographics. 2018; 38: 392–412.
135. Gluckman E, Cappelli B, Bernaudin F, et al. Sickle cell disease: an international survey of results of HLA-identical sibling hematopoietic stem cell transplantation. Blood. 2017; 129: 1548–1556.
136. Fitzhugh CD, Abraham A, Hsieh MM. Alternative donor/unrelated donor transplants for the ?-thalassemia and sickle cell disease. Adv Exp Med Biol. 2017; 1013: 123–153.
137. Ribeil JA, Hacein-Bey-Abina S, Payen E, et al. Gene therapy in a patient with sickle cell disease. N Engl J Med. 2017; 376: 848–855.
138. Sins JWR, Mager DJ, Davis SCAT, et al. Pharmacotherapeutical strategies in the prevention of acute, vaso-occlusive pain in sickle cell disease: a systematic review. Blood Adv. 2017; 1: 1598–1616.
139. Minniti CP, Vichinsky E. Lifespan care in SCD: whom to transition, the patients or the health care system? Am J Hematol. 2017; 92: 487–489.
140. Orvain C, Joly P, Pissard S, et al. Diagnostic approach to hemoglobins with high oxygen affinity: experience from France and Belgium and review of the literature. Ann Biol Clin (Paris). 2017; 75: 39–51.
141. Chan CQ, Low LL, Lee KH. Oral vitamin B12 replacement for the treatment of pernicious anemia. Front Med (Lausanne). 2016; 3: 1–6.
142. Metaxas C, Mathis D, Jeger C, et al. Early biomarker response and patient preferences to oral and intramuscular vitamin B12 substitution in primary care: a randomised parallel-group trial. Swiss Med Wkly. 2017; 147: 1–9.
143. Wang H, Li L, Qin LL, et al. Oral vitamin B12 versus intramuscular vitamin B12 for vitamin B12 deficiency. Cochrane Database Syst Rev. 2018; 3: CD004655.
144. Ting SKS, Earnest A, Li H, et al. B vitamins and cognition in subjects with small vessel disease: a substudy of VITATOPS, a randomized, placebo-controlled trial. J Neurol Sci. 2017; 379: 124–126.
145. Garcia Lopez M, Bonaa KH, Ebbing M, et al. B vitamins and hip fracture: secondary analyses and extended follow-up of two large randomized controlled trials. J Bone Miner Res. 2017; 32: 1981–1989.
146. Huo Y, Li J, Qin X, et al. Efficacy of folic acid therapy in primary prevention of stroke among adults with hypertension in China: the CSPPT randomized clinical trial. JAMA. 2015; 313: 1325–1335.
147. Kotwal J, Kotwal A, Bhalla S, et al. Effectiveness of homocysteine lowering vitamins in prevention of thrombotic tendency at high altitude area: a randomized field trial. Thromb Res. 2015; 136: 758–762.
148. Siebert AK, Obeid R, Weder S, et al. Vitamin B12-fortified toothpaste improves vitamin status in vegans: a 12-wk randomized placebo-controlled study. Am J Clin Nutr. 2017; 105: 618–625.
149. Stabler SP. Anemias due to essential nutrient deficiencies. World Rev Nutr Diet. 2015; 111: 164–168.
150. Green R, Allen LH, Bj?rke-Monsen AL, et al. Vitamin B12 deficiency. Nat Rev Dis Primers. 2017; 3: 1–19.
151. Smith AD, Warren MJ, Refsum H. Vitamin B12. Adv Food Nutr Res. 2018; 83: 215–279.
152. Antony A. Evidence for potential underestimation of clinical folate deficiency in resource-limited countries using blood tests. Nutr Rev. 2017; 75: 600–615.
153. Alpers DH. Absorption and blood/cellular transport of folate and cobalamin: pharmacokinetic and physiological considerations. Biochimie. 2016; 126: 52–56.
154. Cavalcoli F, Zilli A, Conte D, Massironi S. Micronutrient deficiencies in patients with chronic atrophic autoimmune gastritis: a review. World J Gastroenterol. 2017; 23: 563–572.
155. Toh BH. Pathophysiology and laboratory diagnosis of pernicious anemia. Immunol Res. 2017; 65: 326–330.
156. Kamat PK, Mallonee CJ, George AK, et al. Homocysteine, alcoholism, and its potential epigenetic mechanism. Alcohol Clin Exp Res. 2016; 40: 2474–2481.
157. Watkins D, Rosenblatt DS. Lessons in biology from patients with inherited disorders of vitamin B12 and folate metabolism. Biochimie. 2016; 126: 3–5.
158. Yousaf F, Spinowitz B, Charytan C, et al. Pernicious anemia associated cobalamin deficiency and thrombotic microangiopathy: case report and review of the literature. Case Rep Med. 2017; 207: 1–8.
159. Cingam SR, Koshy N, Veillon D, et al. Reversal of isolated 20q deletion with vitamin B12 replacement in a patient with pernicious anaemia. BMJ Case Rep. 2017; 1–4.
160. Hannibal L, Lysne V, Bj?rke-Monsen AL, et al. Biomarkers and algorithms for the diagnosis of vitamin B12 deficiency. Front Mol Biosci. 2016; 3: 1–16.
161. Minalyan A, Benhammou JN, Artashesyan A, et al. Autoimmune atrophic gastritis: current perspectives. Clin Exp Gastroenterol. 2017; 10: 19–27.
162. Mart?n-Alcolea M, Rodr?guez-Hern?ndez I, Aldea M, et al. Chronic proton pump inhibition therapy in the diagnostic accuracy of serum pepsinogen I and gastrin concentrations to identify pernicious anaemia. Clin Biochem. 2017; 50: 481–484.
163. Murphy G, Dawsey SM, Engels EA, et al. Cancer risk after pernicious anemia in the US elderly population. Clin Gastroenterol Hepatol. 2015; 13: 2282–2289.
164. Andres E, Zulfiqar AA, Vogel T. State of the art review: oral and nasal vitamin B12 therapy in the elderly. QJM. 2019. [Epub ahead of print.]
165. Jeruszka-Bielak M, Isman C, Schroder TH, et al. South Asian ethnicity is related to the highest risk of vitamin B12 deficiency in pregnant Canadian women. Nutrients. 2017; 9: 1–13.
166. Rizzo G, Lagan? AS, Rapisarda AM, et al. Vitamin B12 among vegetarians: status, assessment and supplementation. Nutrients. 2016; 8: 1–23.
167. Yang N, Chen J, Zhang H, et al. Horse versus rabbit antithymocyte globulin in immunosuppressive therapy of treatment-naive aplastic anemia: a systematic review and meta-analysis. Ann Hematol. 2017; 96: 2031–2043.
168. Bluteau O, Sebert M, Leblanc T, et al. A landscape of germ line mutations in a cohort of inherited bone marrow failure patients. Blood. 2018; 131: 717–732.
169. Zaimoku Y, Takamatsu H, Hosomichi K, et al. Identification of an HLA class I allele closely involved in the autoantigen presentation in acquired aplastic anemia. Blood. 2017; 129: 2908–2916.
170. Means RT Jr. Pure red cell aplasia. Blood. 2016; 128: 2504–2509.
171. Boddu PC, Kadia TM. Molecular pathogenesis of acquired aplastic anemia. Eur J Haematol. 2019; 102: 103–110.
172. Dietz AC, Mehta PA, Vlachos A, et al. Current knowledge and priorities for future research in late effects after hematopoietic cell transplantation for inherited bone marrow failure syndromes: consensus statement from the Second Pediatric Blood and Marrow Transplant Consortium International Conference on Late Effects after Pediatric Hematopoietic Cell Transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 2017; 23: 726–735.
173. Godley LA, Shimamura A. Genetic predisposition to hematologic malignancies: management and surveillance. Blood. 2017; 130: 424–432.
174. Stanley N, Olson TS, Babushok DV. Recent advances in understanding clonal haematopoiesis in aplastic anaemia. Br J Haematol. 2017; 177: 509–525.
175. Challen GA. Dominating the negative: how DNMT3A mutations contribute to AML pathogenesis. Cell Stem Cell. 2017; 20: 7–8.
176. Young NS. Aplastic anemia. N Engl J Med. 2018; 379: 1643–1656.
177. Eapen M, Wang T, Veys PA, et al. Allele-level HLA matching for umbilical cord blood transplantation for non-malignant diseases in children: a retrospective analysis. Lancet Haematol. 2017; 4: e325–e333.
178. Dietz AC, Savage SA, Vlachos A, et al. Late effects screening guidelines after hematopoietic cell transplantation for inherited bone marrow failure syndromes: consensus statement from the Second Pediatric Blood and Marrow Transplant Consortium International Conference on Late Effects after Pediatric HCT. Biol Blood Marrow Transplant. 2017; 23: 1422–1428.
179. Scheinberg P. Activity of eltrombopag in severe aplastic anemia. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2018; 2018: 450–456.
180. Townsley DM, Winkler T. Nontransplant therapy for bone marrow failure. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2016; 2016: 83–89.
181. Killick SB, Bown N, Cavenagh J, et al. Guidelines for the diagnosis and management of adult aplastic anaemia. Br J Haematol. 2016; 172: 187–207.
182. Pagliuca S, de Latour RP, Volt F, et al. Long term outcomes of cord blood transplantation from an HLA-identical sibling for patients with bone marrow failure disorders: a report from Eurocord, Cord Blood Committee (CBC-CTIWP) and Severe Aplastic Anemia Working Party (SAAWP) of the European Society of Blood and Marrow Transplantation (EBMT). Biol Blood Marrow Transplant. 2017; 23: 1939–1948.
183. MacMillan ML, Defor TE, Young JA, et al. Alternative donor hematopoietic cell transplantation for Fanconi anemia. Blood. 2015; 125: 3798–3804.
184. Mehta PA, Davies SM, Leemhuis T, et al. Radiation-free, alternative-donor HCT for Fanconi anemia patients: results from a prospective multi-institutional study. Blood. 2017; 129: 2308–2315.
185. Buscarlet M, Provost S, Zada YF, et al. DNMT3A and TET2 dominate clonal hematopoiesis and demonstrate benign phenotypes and different genetic predispositions. Blood. 2017; 130: 753–762.
186. Xu T, Stewart KM, Wang X, et al. Metabolic control of TH17 and induced Treg cell balance by an epigenetic mechanism. Nature. 2017; 548: 228–233.
187. Gisslinger H, Gotic M, Holowiecki J, et al. Anagrelide compared with hydroxyurea in WHO-classified essential thrombocythemia: the ANAHYDRET study, a randomized controlled trial. Blood. 2013; 121: 1720–1728.
188. Samuelson B, Chai-Adisaksopha C, Garcia D. Anagrelide compared with hydroxyurea in essential thrombocythemia: a meta-analysis. J Thromb Thrombolysis. 2015; 40: 474–479.
189. Marchioli R, Finazzi G, Specchia G, et al. Cardiovascular events and intensity of treatment in polycythemia vera. N Engl J Med. 2013; 368: 22–33.
190. Squizzato A, Romualdi E, Passamonti F, et al. Antiplatelet drugs for polycythaemia vera and essential thrombocythaemia. Cochrane Database Syst Rev. 2013; 4: CD006503.
191. Vannucchi AM, Kiladjian JJ, Griesshammer M, et al. Ruxolitinib versus standard therapy for the treatment of polycythemia vera. N Engl J Med. 2015; 372: 601–612.
192. Verstovsek S, Mesa RA, GotlibJ, et al. A double-blind, placebo-controlled trial of ruxolitinib for myelofibrosis. N Engl J Med. 2012; 366: 799–807.
193. Harrison C, Kiladjian JJ, Al-Ali HK, et al. JAK inhibition with ruxolitinib versus best available therapy for myelofibrosis. N Engl J Med. 2012; 366: 787–798.
194. Grinfeld J, Nangalia J, Baxter EJ, et al. Classification and personalized prognosis in myeloproliferative neoplasms. N Engl J Med. 2018; 379: 1416–1430.
195. Hinds DA, Barnholt KE, Mesa A, et al. Germ line variants predispose to both JAK2 V617F clonal hematopoiesis and myeloproliferative neoplasms. Blood. 2016; 128: 1121–1128.
196. Vainchenker W, Kralovics R. Genetic basis and molecular pathophysiology of classical myeloproliferative neoplasms. Blood. 2017; 129: 667–679.
197. Caponetti GC, Bagg A. Genetic studies in the evaluation of myeloproliferative neoplasms. Semin Hematol. 2019; 56: 7–14.
198. Elf S, Abdelfattah NS, Baral AJ, et al. Defining the requirements for the pathogenic interaction between mutant calreticulin and MPL in MPN. Blood. 2018; 131: 782–786.
199. Barbui T, Thiele J, Gisslinger H, et al. The 2016 WHO classification and diagnostic criteria for myeloproliferative neoplasms: document summary and in-depth discussion. Blood Cancer J. 2018; 8: 1–11.
200. Zmajkovic J, Lundberg P, Nienhold R, et al. A gain-of-function mutation in EPO in familial erythrocytosis. N Engl J Med. 2018; 378: 924–930.
201. Barbui T, Vannucchi AM, Buxhofer-Ausch V et al. Practice-relevant revision of IPSET-thrombosis based on 1019 patients with WHO-defined essential thrombocythemia. Blood Cancer J. 2015; 5: 1–3.
202. Rumi E, Cazzola M. Diagnosis, risk stratification, and response evaluation in classical myeloproliferative neoplasms. Blood. 2017; 129: 680–692.
203. Guglielmelli P, Lasho TL, Rotunno G, et al. MIPSS70: Mutation-enhanced international prognostic score system for transplantation-age patients with primary myelofibrosis. J Clin Oncol. 2018; 36: 310–318.
204. Tefferi A, Barbui T. Polycythemia vera and essential thrombocythemia: 2019 update on diagnosis, risk-stratification and management. Am J Hematol. 2019; 94: 133–143.
205. McMullin MF, Harrison CN, Ali S, et al. A guideline for the diagnosis and management of polycy- thaemia vera. A British Society for Haematology Guideline. Br J Haematol. 2019; 184: 176–191.
206. Chu DK, Hillis CM, Leong DP, et al. Benefits and risks of antithrombotic therapy in essential throm- bocythemia: a systematic review. Ann Intern Med. 2017; 167: 170–180.
207. McMullin MFF, Mead AJ, Ali S, et al. A guideline for the management of specific situations in polycythaemia vera and secondary erythrocytosis: A British Society for Haematology Guideline. Br J Haematol. 2019; 184: 161–175.
208. Mesa RA,Jamieson C, Bhatia R, et al. NCCN guidelines insights: myeloproliferative neoplasms, version 2.2018. J Natl Compr Canc Netw. 2017; 15: 1193–1207.
209. Vannucchi AM, Harrison CN. Emerging treatments for classical myeloproliferative neoplasms. Blood. 2017; 129: 693–703.
210. Palandri F, Sabattini E, Maffioli M. Treating early-stage myelofibrosis. Ann Hematol. 2019; 98: 241–253.
211. Tefferi A. Primary myelofibrosis: 2019 update on diagnosis, risk-stratification and management. Am J Hematol. 2018; 93: 1551–1560.
212. Kroger N, Giorgino T, Scott BL, et al. Impact of allogeneic stem cell transplantation on survival of patients less than 65 years of age with primary myelofibrosis. Blood. 2015; 125: 3347–3350.
213. Gafter-Gvili A, Fraser A, Paul M, et al. Antibiotic prophylaxis for bacterial infections in afebrile neutropenic patients following chemotherapy. Cochrane Database Syst Rev. 2012; 1: CD004386.
214. Skoetz N, BohliusJ, Engert A, et al. Prophylactic antibiotics or G(M)-CSF for the prevention of infections and improvement of survival in cancer patients receiving myelotoxic chemotherapy. Cochrane Database Syst Rev. 2015; 12: CD007107.
215. Estcourt LJ, Stanworth S, Doree C, et al. Granulocyte transfusions for preventing infections in people with neutropenia or neutrophil dysfunction. Cochrane Database Syst Rev. 2015; 6: CD005341.
216. Paul M, Dickstein Y, Schlesinger A, et al. Beta-lactam versus beta-lactam-aminoglycoside combination therapy in cancer patients with neutropenia. Cochrane Database Syst Rev. 2013; 6: CD003038.
217. van Dalen EC, Mank A, Leclercq E, et al. Low bacterial diet versus control diet to prevent infection in cancer patients treated with chemotherapy causing episodes of neutropenia. Cochrane Database Syst Rev. 2016; 4: CD006247.
218. Bartels M, Govers AM, Fleskens V, et al. Acetylation of C/EBPepsilon is a prerequisite for terminal neutrophil differentiation. Blood. 2015; 125: 1782–1792.
219. Widick P, Winer ES. Leukocytosis and leukemia. Prim Care. 2016; 43: 575–587.
220. Shah SS, Parikh RS, Vaswani LP, et al. Familial Pelger-Huet anomaly. Indian J Hematol Blood Transfus. 2016; 32: 347–350.
221. Wolach B, Gavrieli R, Wolach O, et al. Leucocyte adhesion deficiency — a multicentre national experience. Eur J Clin Invest. 2018; 1–17.
222. Venugopal S, Mascarenhas J. Chronic neutrophilic leukemia: current and future perspectives. Clin Lymphoma Myeloma Leuk. 2018; 19: 129–134.
223. Lynch DT, Hall J, Foucar K. How I investigate monocytosis. Int J Lab Hematol. 2018; 40: 107–114.
224. Vander Meeren S, Heyrman B, Renmans W, et al. Lymphoma-like monoclonal B cell lymphocytosis in a patient population: biology, natural evolution, and differences from CLL-like clones. Ann Hematol. 2018; 97: 1219–1227.
225. Larsen RL, Savage NM. How I investigate eosinophilia. Int J Lab Hematol. 2019; 41: 153–161.
226. PalmbladJ, Hoglund P. Ethnic benign neutropenia: a phenomenon finds an explanation. Pediatr Blood Cancer. 2018; 65: 1–7.
227. Donadieu J, Beaupain B, Fenneteau O, et al. Congenital neutropenia in the era of genomics: classification, diagnosis, and natural history. Br J Haematol. 2017; 179: 557–574.
228. Nayak RC, Trump LR, Aronow BJ, et al. Pathogenesis of ELANE-mutant severe neutropenia revealed by induced pluripotent stem cells. J Clin Invest. 2015; 125: 3103–3116.
229. Furutani E, Newburger PE, Shimamura A. Neutropenia in the age of genetic testing: advances and challenges. Am J Hematol. 2019; 94: 384–393.
230. Andres E, Mourot-Cottet R. Non-chemotherapy drug-induced neutropenia — an update. Expert Opin Drug Saf. 2017; 16: 1235–1242.
231. Dale DC, Bolyard AA. An update on the diagnosis and treatment of chronic idiopathic neutropenia. Curr Opin Hematol. 2017; 24: 46–53.
232. Sicre de Fontbrune F, Moignet A, Beaupain B, et al. Severe chronic primary neutropenia in adults: report on a series of 108 patients. Blood. 2015; 126: 1643–1650.
233. Dale DC. How I diagnose and treat neutropenia. Curr Opin Hematol. 2016; 23: 1–4.
234. Palmblad J, Nilsson CC, Hoglund P, et al. How we diagnose and treat neutropenia in adults. Expert Rev Hematol. 2016; 9: 479–487.
235. Taplitz RA, Kennedy EB, Bow EJ, et al. Antimicrobial prophylaxis for adult patients with cancer- related immunosuppression: ASCO and IDSA clinical practice guideline update. J Clin Oncol. 2018; 3043–3054.
236. Curtis BR. Non-chemotherapy drug-induced neutropenia: key points to manage the challenges. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2017; 2017: 187–193.
237. Nin CS, de Souza VVS, do Amaral RH, et al. Thoracic lymphadenopathy in benign diseases: a state of the art review. Respir Med. 2016; 112: 10–17.
238. Indolfi P, Perrotta S, Rossi F, et al. Childhood head and neck lymphadenopathy: a report by a single institution (2003–2017). J Pediatr Hematol Oncol. 2019; 41: 17–20.
239. Gaddey HL, Riegel AM. Unexplained lymphadenopathy: evaluation and differential diagnosis. Am Fam Physician. 2016; 94: 896–903.
240. American College of Radiology. ACR Appropriateness Criteria: neck mass/adenopathy. https://acsearch.acr.org/docs/69504/Narrative. Accessed March 12, 2019.
241. Ebell MH, Call M, Shinholser J, Gardner J. Does this patient have infectious mononucleosis? The rational clinical examination systematic review. JAMA. 2016; 315: 1502–1509.
242. Abou Youssef HA, Elzorkany MA, Hussein SA, et al. Evaluation of mediastinal lymphadenopathy by diffusion weighted MRI; correlation with histopathological results. Adv Respir Med. 2019; 87: 175–183.
243. Farndon S, Behjati S, Jonas N, Messahel B. How to use...lymph node biopsy in paediatrics. Arch Dis Child Educ Pract Ed. 2017; 102: 244–248.
244. Tzankov A, Dirnhofer S. A pattern-based approach to reactive lymphadenopathies. Semin Diagn Pathol. 2018; 35: 4–19.
245. Winter JN, Peterson LC. Lymphocytosis, lymphadenopathy: benign or malignant? Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2015; 2015: 106–110.
246. Curovic Rotbain E, Lund Hansen D, Schaffalitzky de Muckadell O, et al. Splenomegaly—diagnostic validity, work-up, and underlying causes. PLoS ONE. 2017; 12: 1–11.
247. Hangge PT, Sheaffer WW, Neville M, et al. The diagnostic value of splenectomy in patients without a definitive preoperative diagnosis. Am J Surg. 2019; 217: 78–82.
248. Misiakos EP, Bagias G, Liakakos T, Machairas A. Laparoscopic splenectomy: current concepts. World J Gastrointest Endosc. 2017; 9: 428–437.
249. Dionne B, Dehority W, Brett M, et al. The asplenic patient: post-insult immunocompetence, infection, and vaccination. Surg Infect (Larchmt). 2017; 18: 536–544.
250. Costi R, Castro Ruiz C, Romboli A, et al. Partial splenectomy: who, when and how. A systematic review of the 2130 published cases. J Pediatr Surg. 2018. [Epub ahead of print.]
251. Gadner H, Minkov M, Grois N, et al. Therapy prolongation improves outcome in multisystem Langerhans cell histiocytosis. Blood. 2013; 121: 5006–5014.
252. Emile JF, Abla O, Fraitag S, et al. Revised classification of histiocytoses and neoplasms of the macrophage-dendritic cell lineages. Blood. 2016; 127: 2672–2681.
253. Kobayashi M, Tojo A. Langerhans cell histiocytosis in adults: advances in pathophysiology and treatment. Cancer Sci. 2018; 109: 3707–3713.
254. Rollins BJ. Genomic alterations in Langerhans cell histiocytosis. Hematol Oncol Clin North Am. 2015; 29: 839–851.
255. Chakraborty R, Burke TM, Hampton OA, et al. Alternative genetic mechanisms of B^AF activation in Langerhans cell histiocytosis. Blood. 2016; 128: 2533–2537.
256. Allen CE, Merad M, McClain KL. Langerhans-cell histiocytosis. N Engl J Med. 2018; 379: 856–868.
257. Hyman DM, Puzanov I, Subbiah V et al. Vemurafenib in multiple nonmelanoma cancers with BrAF V600 mutations. N Engl J Med. 2015; 373: 726–736.
258. Campochiaro C, Tomelleri A, Cavalli G, et al. Erdheim-Chester disease. Eur J Intern Med. 2015; 26: 223–229.
259. Diamond EL, Durham BH, Haroche J, et al. Diverse and targetable kinase alterations drive histiocytic neoplasms. Cancer Discov. 2016; 6: 154–165.
260. Ghotra AS, Thompson K, Lopez-Mattei J, et al. Cardiovascular manifestations of Erdheim-Chester disease. Echocardiography. 2019; 36: 229–236.
261. Brown RA, Kwong BY, McCalmont TH, et al. ETV3-NCOA2 in indeterminate cell histiocytosis: clonal translocation supports sui generis. Blood. 2015; 126: 2344–2345.
262. Janssen D, Harms D. Juvenile xanthogranuloma in childhood and adolescence: a clinicopathologic study of 129 patients from the Kiel Pediatric Tumor Registry. Am J Surg Pathol. 2005; 29: 21–28.
263. Hilal T, DiCaudo DJ, Connolly SM, et al. Necrobiotic xanthogranuloma: a 30-year single-center experience. Ann Hematol. 2018; 97: 1471–1479.
264. Kumar B, Singh N, Rahnama-Moghadam S, et al. Multicentric reticulohistiocytosis: a multicenter case series and review of literature. J Clin Rheumatol. 2018; 24: 45–49.
265. Piris MA, Aguirregoicoa E, Montes-Moreno S, et al. Castleman disease and Rosai-Dorfman disease. Semin Diagn Pathol. 2018; 35: 44–53.
266. Campo M, Berliner N. Hemophagocytic lymphohistiocytosis in adults. Hematol Oncol Clin North Am. 2015; 29: 915–925.
267. Schram AM, Berliner N. How I treat hemophagocytic lymphohistiocytosis in the adult patient. Blood. 2015; 125: 2908–2914.
268. Schram AM, Campigotto F, Mullally A, et al. Marked hyperferritinemia does not predict for HLH in the adult population. Blood. 2015; 125: 1548–1552.
269. Ortega HG, Liu MC, Pavord ID, et al. Mepolizumab treatment in patients with severe eosinophilic asthma. N Engl J Med. 2014; 371: 1198–1207.
270. Castro M, Zangrillia J, Wechsler ME, et al. Reslizumab for inadequately controlled asthma with elevated blood eosinophil counts: results from two multicenter, parallel, double-blind, randomised, placebo-controlled, phase 3 trials. Lancet Respir Med. 2015; 3: 355–366.
271. FitzGerald JM, Bleeker ER, Nair P, et al. Benralizumab, an anti-interleukin-5 receptor a monoclonal antibody, as add-on treatment for patients with severe, uncontrolled, eosinophilic asthma (CALIMA): a randomised, double-blind, placebo-controlled phase 3 trial. Lancet. 2016; 388: 2128–2141.
272. Wechsler ME, Akuthota P, Jayne D. Mepolizumab or placebo for eosinophilic granulomatosis with polyangiitis. N Engl J Med. 2017; 376: 1921–1932.
273. Gotlib J. World Health Organization-defined eosinophilic disorders: 2017 update on diagnosis, risk stratification, and management. Am J Hematol. 2017; 92: 1243–1259.
274. Klion AD. How I treat hypereosinophilic syndromes. Blood. 2015; 126: 1069–1077.
275. Willebrand R, Voehringer D. Regulation of eosinophil development and survival. Curr Opin Hematol. 2017; 24: 9–15.
276. Weller PF, Spencer LA. Functions of tissue-resident eosinophils. Nat Rev Immunol. 2017; 17: 746–760.
277. Wen T, Rothenberg ME. The regulatory function of eosinophils. Microbiol Spectr. 2016; 1–12.
278. Reiter A, Gotlib J. Myeloid neoplasms with eosinophilia. Blood. 2017; 129: 704–714.
279. Li B, Zhang G, Li C, et al. Lyn mediates FIP1L1-PDGFRA signal pathway facilitating IL-5RA. intracellular signal through FIP1L1-PDGFRA/JAK2/Lyn/Akt network complex in CEL. Oncotarget. 2016; 5: 64984–64998.
280. Kottyan LC, Rothenberg ME. Genetics of eosinophilic esophagitis. Mucosal Immunol. 2017; 10: 580–588.
281. Khoury P, Bochner BS. Consultation for elevated blood eosinophils: clinical presentations, high value diagnostic tests, and treatment options. J Allergy Clin Immunol Pract. 2018; 6: 1446–1453.
282. O’Connell EM, Nutman TB. Eosinophilia in infectious diseases. Immunol Allergy Clin North Am. 2015; 35: 493–522.
283. Navabi B, Upton JE. Primary immunodeficiencies associated with eosinophilia. Allergy Asthma Clin Immunol. 2016; 12: 27.
284. Wang SA. The diagnostic work-up of hypereosinophilia. Pathobiology. 2019; 86: 39–52.
285. Maric I, Sun X. Advances in diagnosis of mastocytosis and hypereosinophilic syndrome. Semin Hematol. 2019; 56: 22–29.
286. Khoury P, Abiodun AO, Holland-Thomas N, et al. Hypereosinophilic syndrome subtype predicts responsiveness to glucocorticoids. J Allergy Clin Immunol Pract. 2018; 6: 190–195.
287. Khoury P, Desmond R, Pabon A, et al. Clinical features predict responsiveness to imatinib in platelet-derived growth factor receptor-alpha-negative hypereosinophilic syndrome. Allergy. 2016; 71: 803–810.
288. Kuang FL, Klion AD. Biologic agents for the treatment of hypereosinophilic syndromes. J Allergy Clin Immunol Pract. 2017; 5: 1502–1509.
289. Wikkelse A, Wetterslev J, M?ller AM, Afshari A. Thromboelastography (TEG) or rotational throm- boelastometry (ROTEM) to monitor haemostatic treatment in bleeding patients: a systematic review and meta-analysis and trial sequential analysis. Anaesthesia. 2017; 72: 519–531.
290. Carrier M, Lazo-Langner A, Shivakumar S, et al. Screening for occult cancer in unprovoked venous thromboembolism. N Engl J Med. 2015; 373: 697–704.
291. Grover SP, Mackman N. Intrinsic pathway of coagulation and thrombosis. Arterioscler Thromb Vasc Biol. 2019; 39: 331–338.
292. Bye AP, Unsworth AJ, Gibbins JM. Platelet signaling: a complex interplay between inhibitory and activatory networks. J Thromb Haemost. 2016; 14: 918–930.
293. Bakchoul T, Marini I. Drug-associated thrombocytopenia. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2018; 2018: 576–583.
294. Hurwitz A, Massone R, Lopez BL. Acquired bleeding disorders. Hematol Oncol Clin North Am. 2017; 31: 1123–1145.
295. Palla R, Siboni SM, Menegatti M, et al. Establishment of a bleeding score as a diagnostic tool for patients with rare bleeding disorders. Thromb Res. 2016; 148: 128–134.
296. Lorand L, Iismaa SE. Transglutaminase diseases: from biochemistry to the bedside. FASEB J. 2019; 33: 3–12.
297. Mezzano D, Quiroga T. Diagnostic challenges of inherited mild bleeding disorders: a bait for poorly explored clinical and basic research. J Thromb Haemost. 2019; 17: 257–270.
298. Rand ML, Reddy EC, Israels SJ. Laboratory diagnosis of inherited platelet function disorders. Transfus Apher Sci. 2018; 57: 485–493.
299. Lance MD. A general review of major global coagulation assays: thrombelastography, thrombin generation test and clot waveform analysis. Thromb J. 2015; 13: 1–6.
300. Levi M, Hunt BJ. A critical appraisal of point-of-care coagulation testing in critically ill patients. J Thromb Haemost. 2015; 13: 1960–1967.
301. Nogami K. The utility of thromboelastography in inherited and acquired bleeding disorders. Br J Haematol. 2016; 174: 503–514.
302. Othman M, Kaur H. Thromboelastography (TEG). Methods Mol Biol. 2017; 1646: 533–543.
303. National Institute for Health and Care Excellence. Detecting, managing and monitoring haemostasis: viscoelastometric point-of-care testing (ROTEM, TEG and Sonoclot systems). https://www.nice.org.uk/guidance/dg13 Accessed March 7, 2019.
304. Borges NM, Thachil J. The relevance of the coagulation screen before surgery. Br J Hosp Med (Lond). 2017; 78: 566–570.
305. Pruthi PK. Optimal utilization of thrombophilia testing. Int J Lab Hematol. 2017; 39 (suppl 1): 104–110.
306. Gheshmy A, Carrier M. Venous thromboembolism and occult cancer: impact on clinical practice. Thromb Res. 2016; 140 (suppl 1): S8–S11.
307. Delluc A, Antic D, Lecumberri R, et al. Occult cancer screening in patients with venous thromboembolism: guidance from the SSC of the ISTH. J Thromb Haemost. 2017; 15: 2076–2079.
308. Stanworth SJ, Estcourt LJ, Powter G, et al. A no-prophylaxis platelet-transfusion strategy for hematologic cancers. N Engl J Med. 2013; 368: 1771–1780.
309. Slichter SJ, Kaufman RM, Assmann SF, et al. Dose of prophylactic platelet transfusions and prevention of hemorrhage. N Engl J Med. 2010; 362: 600–613.
310. Wei Y, Ji XB, Wang YW, et al. High-dose dexamethasone vs prednisone for treatment of adult immune thrombocytopenia: a prospective multicenter randomized trial. Blood. 2016; 127: 296–302.
311. Gudbrandsdottir S, Birgens HS, Frederiksen H, et al. Rituximab and dexamethasone vs dexamethasone monotherapy in newly diagnosed patients with primary immune thrombocytopenia. Blood. 2013; 121: 1976–1981.
312. Scully M, Cataland SR, Peyvandi F, et al. Caplacizumab treatment for acquired thrombotic thrombocytopenic purpura. N Engl J Med. 2019; 380: 335–346.
313. Estcourt LJ, Birchall J, Allard S, et al. Guidelines for the use of platelet transfusions. Br J Haematol. 2017; 176: 365–394.
314. Kaufman RM, Djulbegovic B, Gernsheimer T, et al. Platelet transfusion: a clinical practice guideline from the AABB. Ann Intern Med. 2015; 162: 205–213.
315. Goel R, Ness PM, Takemoto CM, et al. Platelet transfusions in platelet consumptive disorders are associated with arterial thrombosis and in-hospital mortality. Blood. 2015; 125: 1470–1476.
316. Bakchoul T, Marini I. Drug-associated thrombocytopenia. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2018; 2018: 576–583.
317. De Silva E, Kim H. Drug-induced thrombocytopenia: focus on platelet apoptosis. Chem Biol Interact. 2018; 284: 1–11.
318. Shen YM, Wolfe H, Barman S. Evaluating thrombocytopenia during heparin therapy. JAMA. 2018; 319: 497–498.
319. Arepally GM. Heparin-induced thrombocytopenia. Blood. 2017; 129: 2864–2872.
320. East JM, Cserti-Gazdewich CM, Granton JT. Heparin-induced thrombocytopenia in the critically ill patient. Chest. 2018; 154: 678–690.
321. Nasiripour S, Saif M, Farasatinasab M, et al. Dabigatran as a treatment option for heparin-induced thrombocytopenia. J Clin Pharmacol. 2019; 59: 107–111.
322. McGowan KE, Makari J, Diamantouros A, et al. Reducing the hospital burden of heparin-induced thrombocytopenia: impact of an avoid-heparin program. Blood. 2016; 127: 1954–1959.
323. Larkin CM, Santos-Martinez MJ, Ryan T, et al. Sepsis-associated thrombocytopenia. Thromb Res. 2016; 141: 11–16.
324. Rodeghiero F. A critical appraisal of the evidence for the role of splenectomy in adults and children with ITP. Br J Haematol. 2018; 181: 183–195.
325. Chaturvedi S, Arnold DM, McCrae KR. Splenectomy for immune thrombocytopenia: down but not out. Blood. 2018; 131: 1172–1182.
326. Wong RSM, Saleh MN, KhelifA, et al. Safety and efficacy of long-term treatment of chronic/persistent ITP with eltrombopag: final results of the EXTEND study. Blood. 2017; 130: 2527–2536.
327. Neunert CE, Cooper N. Evidence-based management of immune thrombocytopenia: ASH guideline update. Hematology Am Soc Hematol Educ Program. 2018; 2018: 568–575.
328. Joly BS, Coppo P, Veyradier A. Pediatric thrombotic thrombocytopenic purpura. Eur J Haematol. 2018; 101: 425–434.
329. Shatzel JJ, Taylor JA. Syndromes of thrombotic microangiopathy. Med Clin North Am. 2017; 101: 395–415.
330. Sadler JE. Pathophysiology of thrombotic thrombocytopenic purpura. Blood. 2017; 130: 1181–1188.
331. Jokiranta TS. HUS and atypical HUS. Blood. 2017; 129: 2847–2856.
332. Cody EM, Dixon BP. Hemolytic uremic syndrome. Pediatr Clin North Am. 2019; 66: 235–246.
333. Goldman BG, Hehir MP, Yambasu S, et al. The presentation and management of platelet disorders in pregnancy. Eur J Haematol. 2018; 100: 560–566.
334. Hayashi T, Hirayama F. Advances in alloimmune thrombocytopenia: perspectives on current concepts of human platelet antigens, antibody detection strategies, and genotyping. Blood Transfus. 2015; 13: 380–390.
335. Simeoni I, Stephens JC, Hu F, et al. A high-throughput sequencing test for diagnosing inherited bleeding, thrombotic, and platelet disorders. Blood. 2016; 127: 2791–2803.
336. Gill JC, Castaman G, Windyga J, et al. Hemostatic efficacy, safety, and pharmacokinetics of a recombinant von Willebrand factor in severe von Willebrand disease. Blood. 2015; 126: 2038–2046.
337. Geisthoff UW, Seyfert UT, Kubler M, et al. Treatment of epistaxis in hereditary hemorrhagic telangiectasia with tranexamic acid — a double-blind placebo-controlled cross-over phase IIIb study. Thromb Res. 2014; 134: 565–571.
338. Whitehead KJ, Sautter NB, McWilliams JP, et al. Effect of topical intranasal therapy on epistaxis frequency in patients with hereditary hemorrhagic telangiectasia: a randomized clinical trial. JAMA. 2016; 316: 943–951.
339. Leebeek FW, Eikenboom JC. Von Willebrand’s disease. N Engl J Med. 2016; 375: 2067–2080.
340. Lenting PJ, Christophe OD, Denis CV Von Willebrand factor biosynthesis, secretion, and clearance: connecting the far ends. Blood. 2015; 125: 2019–2028.
341. South K, Lane DA. ADAMTS-13 and von Willebrand factor: a dynamic duo. J Thromb Haemost. 2018; 16: 6–18.
342. Ng C, Motto DG, Di Paola J. Diagnostic approach to von Willebrand disease. Blood. 2015; 125: 2029–2037.
343. Sivapalaratnam S, Collins J, Gomez K. Diagnosis of inherited bleeding disorders in the genomic era. Br J Haematol. 2017; 179: 363–376.
344. Lavin M, O’Donnell JS. How I treat low von Willebrand factor levels. Blood. 2019; 133: 795–804.
345. Keesler DA, Flood VH. Current issues in diagnosis and treatment of von Willebrand disease. Res Pract Thromb Haemost. 2018; 2: 34–41.
346. Mital A. Acquired von Willebrand syndrome. Adv Clin Exp Med. 2016; 25: 1337–1344.
347. Leinoe E, Zetterberg E, Kinalis S, et al. Application ofwhole-exome sequencing to direct the specific functional testing and diagnosis of rare inherited bleeding disorders in patients from the Oresund Region, Scandinavia. Br J Haematol. 2017; 179: 308–322.
348. Nurden AT. Should studies on Glanzmann thrombasthenia not be telling us more about cardiovascular disease and other major illnesses? Blood Rev. 2017; 31: 287–299.
349. van Asten I, Schutgens REG, Baaij M, et al. Validation of flow cytometric analysis of platelet function in patients with a suspected platelet function defect. J Thromb Haemost. 2018; 16: 689–698.
350. Selle F, James C, Tuffigo M, et al. Clinical and laboratory findings in patients with delta-storage pool disease: a case series. Semin Thromb Hemost. 2017; 43: 48–58.
351. Orsini S, Noris P, Bury L, et al. Bleeding risk of surgery and its prevention in patients with inherited platelet disorders. Haematologica. 2017; 102: 1192–1203.
352. Casari C, Bergmeier W. Acquired platelet disorders. Thromb Res. 2016; 141 (suppl 2): S73–S75.
353. Kjeldsen A, Aagaard KS, Torring PM, et al. 20-year follow-up study of Danish HHT patients-survival and causes of death. Orphanet J Rare Dis. 2016; 11: 157.
354. Eagleton MJ. Arterial complications of vascular Ehlers-Danlos syndrome. J Vasc Surg. 2016; 64: 1869–1880.
355. Peyvandi F, Mannucci PM, Garagiola I, et al. A randomized trial of factor VIII and neutralizing antibodies in hemophilia A. N Engl J Med. 2016; 374: 2054–2064.
356. Mahlangu J, Oldenburg J, Paz-Priel I, et al. Emicizumab prophylaxis in patients who have hemophilia A without inhibitors. N Engl J Med. 2018; 379: 811–822.
357. Oldenburg J, Mahlangu JN, Kim B, et al. Emicizumab prophylaxis in hemophilia A with inhibitors. N Engl J Med. 2017; 377: 809–818.
358. Oldenburg J, Mahlangu JN, Bujan W, et al. The effect of emicizumab prophylaxis on health-related outcomes in persons with haemophilia A with inhibitors: HAVEN 1 Study. Haemophilia. 2019; 25: 33–44.
359. Hay CR, DiMichele DM, the International Immune Tolerance Study. The principal results of the International Immune Tolerance Study: a randomized dose comparison. Blood. 2012; 119: 1335–1344.
360. van Vulpen LFD, Holstein K, Martinolli C. Joint disease in haemophilia: pathophysiology, pain and imaging. Haemophilia. 2018; 24 (suppl 6): 44–49.
361. Hanley J, McKernan A, Creagh MD, et al. Guidelines for the management of acute joint bleeds and chronic synovitis in haemophilia: a United Kingdom Haemophilia Centre Doctors’ Organisation (UKHCDO) guideline. Haemophilia. 2017; 23: 511–520.
362. Manco-Johnson MJ, SoucieJM, Gill JC. Prophylaxis: usage, bleeding rates, and joint outcomes of hemophilia, 1999-2010: a surveillance project. Blood. 2017; 129: 2368–2374.
363. Nacca CR, Harris AP, Tuttle JR. Hemophilic arthropathy. Orthopedics. 2017; 40: e940–e946.
364. Iorio A, Fischer K, Blanchette V, et al. Tailoring treatment of haemophilia B: accounting for the distribution and clearance of standard and extended half-life FIX concentrates. Thromb Haemost. 2017; 117: 1023–1030.
365. Holme PA, Tj?nnfjord GE, Batorova A. Continuous infusion of coagulation factor concentrates during intensive treatment. Haemophilia. 2018; 24: 24–32.
366. Rodriguez-Merchan EC, Valentino LA. Emicizumab: review of the literature and critical appraisal. Haemophilia. 2019; 25: 11–20.
367. Weyand AC, Pipe SW. New therapies for hemophilia. Blood. 2019; 133: 389–398.
368. Garagiola I, Palla R, Peyvandi F. Risk factors for inhibitor development in severe hemophilia A. Thromb Res. 2018; 168: 20–27.
369. Delignat S, Tayes J, Russick J, et al. Inhibitor formation in congenital hemophilia A: an immunological perspective. Semin Thromb Hemost. 2018; 44: 517–530.
370. Ljung RCR. How I manage patients with inherited haemophilia A and B and factor inhibitors. Br J Haematol. 2018; 180: 501–510.
371. Sherman A, Biswas M, Herzog RW. Tolerance induction in hemophilia: innovation and accomplishments. Curr Opin Hematol. 2018; 25: 365–372.
372. Perrin GQ, Herzog RW, Markusic DM. Update on clinical gene therapy for hemophilia. Blood. 2019; 133: 407–414.
373. George LA, Sullivan SK, Giermasz A, et al. Hemophilia B gene therapy with a high-specific-activity factor IX variant. N Engl J Med. 2017; 377: 2215–2227.
374. Miesbach W, Meijer K, Coppens M, et al. Gene therapy with adeno-associated virus vector 5-human factor IX in adults with hemophilia B. Blood. 2018; 131: 1022–1031.
375. Rangarajan S, Walsh L, Lester W, et al. AAV5-Factor VIII gene transfer in severe hemophilia. N Engl J Med. 2017; 377: 2519–2530.
376. Pasi KJ, Rangarajan S, Georgiev P, et al. Targeting of antithrombin in hemophilia A and B with RNAi therapy. N Engl J Med. 2017; 377: 819–828.
377. Karimi M, Peyvandi F, Naderi M, Shapiro A. Factor XIII deficiency diagnosis: challenges and tools. Int J Lab Hematol. 2018; 40: 3–11.
378. Kearon C, Parpia S, Spencer FA, et al. Antiphospholipid antibodies and recurrent thrombosis after a first unprovoked venous thromboembolism. Blood. 2018; 131: 2151–2160.
379. Devreese KMJ, Ortel TL, Pengo V, et al. Laboratory criteria for antiphospholipid syndrome: communication from the SSC of the ISTH. J Thromb Haemost. 2018; 16: 809–813.
380. Umemura Y, Yamakawa K, Ogura H, et al. Efficacy and safety of anticoagulant therapy in three specific populations with sepsis: a meta-analysis of randomized controlled trials. J Thromb Haemost. 2016; 14: 518–530.
381. Ranieri VM, Thompson BT, Barie PS, et al. Drotrecogin alfa (activated) in adults with septic shock. N Engl J Med. 2012; 366: 2055–2064.
382. Afdhal NH, Giannini EG, Tayyab G, et al. Eltrombopag before procedures in patients with cirrhosis and thrombocytopenia. N Engl J Med. 2012; 367: 716–724.
383. Afdhal NH, Dusheiko GM, Giannini EG, et al. Eltrombopag increases platelet numbers in thrombocytopenic patients with HCV infection and cirrhosis, allowing for effective antiviral therapy. Gastroenterology. 2014; 146: 442–452.
384. Boral BM, Williams DJ, Boral LI. Disseminated intravascular coagulation. Am J Clin Pathol. 2016; 146: 670–680.
385. Levi M. Management of cancer-associated disseminated intravascular coagulation. Thromb Res. 2016; 140 (suppl 1): S66–S70.
386. Warkentin TE. Ischemic limb gangrene with pulses. N Engl J Med. 2015; 373: 642–655.
387. Squizzato A, Rancan E, Thachil J, et al. Diagnosis of overt and non-overt disseminated intravascular coagulation: a survey among experts and a call for action from the ISTH. Thromb Res. 2017; 152: 74–76.
388. Levi M, Sivapalaratnam S. Disseminated intravascular coagulation: an update on pathogenesis and diagnosis. Expert Rev Hematol. 2018; 11: 663–672.
389. Collins P, Abdul-Kadir R, Thachil J. Management of coagulopathy associated with postpartum hemorrhage: guidance from the SSC of the ISTH. J Thromb Haemost. 2016; 14: 205–210.
390. Scully M, Levi M. How we manage haemostasis during sepsis. Br J Haematol. 2019. [Epub ahead of print.]
391. Squizzato A, Hunt BJ, Kinasewitz GT, et al. Supportive management strategies for disseminated intravascular coagulation. An international consensus. Thromb Haemost. 2016; 115: 896–904.
392. Allingstrup M, Wetterslev J, Ravn FB, et al. Antithrombin III for critically ill patients. Cochrane Database Syst Rev. 2016; 2: CD005370.
393. Hayakawa M, Kushimoto S, Watanabe E, et al. Pharmacokinetics of recombinant human soluble thrombomodulin in disseminated intravascular coagulation patients with acute renal dysfunction. Thromb Haemost. 2017; 117: 851–859.
394. Allison MG, Shanholtz CB, Sachdeva A. Hematological issues in liver disease. Crit Care Clin. 2016; 32: 385–396.
395. Tripodi A, Primignani M, Mannucci PM, et al. Changing concepts of cirrhotic coagulopathy. Am J Gastroenterol. 2017; 112: 274–281.
396. Barton CA. Treatment of coagulopathy related to hepatic insufficiency. Crit Care Med. 2016; 44: 1927–1933.
397. Leonardi F, De Maria N, Villa E. Anticoagulation in cirrhosis: a new paradigm? Clin Mol Hepatol. 2017; 23: 13–21.
398. Yates SG, Gavva C, Agrawal D, et al. How do we transfuse blood components in cirrhotic patients undergoing gastrointestinal procedures? Transfusion. 2016; 56: 791–798.
399. Tie J-K, Carneiro JDA, Jin CD, et al. Characterization of vitamin K-dependent carboxylase mutations that cause bleeding and nonbleeding disorders. Blood. 2016; 127: 1847–1855.
400. Bergamin FS, Almeida JP, Landoni G, et al. Liberal versus restrictive transfusion strategy in critically ill oncologic patients: the transfusion requirements in critically ill oncologic patients randomized controlled trial. Crit Care Med. 2017; 45: 766–773.
401. Mazer CD, Whitlock RP, Fergusson DA, et al. Six-month outcomes after restrictive or liberal transfusion for cardiac surgery. N Engl J Med. 2018; 379: 1224–1233.
402. Cooper DJ, McQuilten ZK, Nichol A, et al. Age of red cells for transfusion and outcomes in critically ill adults. N Engl J Med. 2017; 377: 1858–1867.
403. Baharoglu MI, Cordonnier C, Al-Shahi Salman R, et al. Platelet transfusion versus standard care after acute stroke due to spontaneous cerebral haemorrhage associated with antiplatelet therapy (PATCH): a randomised, open-label, phase 3 trial. Lancet. 2016; 387: 2605–2613.
404. Holcomb JB, Tilley BC, Baraniuk S, et al. Transfusion of plasma, platelets, and red blood cells in a 1:1:1 vs 1:1:2 ratio and mortality in patients witch severe trauma:the PROPPR randomized clinical_ trial. JAMA. 2015; 313: 471–482.
405. Ellingson KD, Sapiano MRP, Haass KA, et al. Continued decline in blood collection and transfusion in the United States-2015. Transfusion. 2017; 57 (suppl 2): 1588–1598.
406. Garraud O. Are all the therapeutic plasma preparations the same: is it worth assessing them in clinical trials? Transfus Apher Sci. 2017; 56: 920–923.
407. Clebone A. Transfusion reactions and cognitive aids. Curr Opin Anaesthesiol. 2019. [Epub ahead of print.]
408. Saa P, Proctor M, Foster G, et al. Investigational testing for Zika virus among U.S. blood donors. N Engl J Med. 2018; 378: 1778–1788.
409. Delaney M, Wendel S, Bercovitz RS, et al. Transfusion reactions: prevention, diagnosis, and treat- ment. Lancet. 2016; 388: 2825–2836.
410. Reynolds C, Davison KL, Brailsford SR. Safe supplies: few infections in UK blood and tissue donors. Transfus Med. 2019. [Epub ahead of print.]
411. Otrock ZK, Liu C, Grossman BJ . Transfusion-related acute lung injury risk mitigation: an update Vox Sang. 2017; 112: 694–703.
412. Korolovi I, Ostro J, Tsubota H b et al. A systematic review of transfusion-associated graft-versus-host disease. Blood. 2015; 126: 406–414.
413. Carson JL, Guyatt G, Heddle NM, et al. Clinical practice guidelines from the AABB: red blood cell transfusion thresholds and storage. JAMA. 2016; 316: 2025–2035.
414. Carson JL, Triulzi DJ, Ness PM. Indications for adverse effects of red-cell transfusion. N Engl J Med. 2017; 377: 1261–1272.
415. Kaufman RM, Djulbegovic B, Gernsheimer T, et al. Platelet transfusion: a clinical practice guideline from the AABB. Ann Intern Med. 2015; 162: 205–213.
416. McQuilten ZK, Crighton G,Brunskill S, et al. Optimal dose, timing and ratio of blood products in massive transfusion: results from a systematic review. Transfus Med Rev. 2018; 32: 6–15.
417. Chai-Adisaksopha C, Hillis C, Siegal DM, et al. Prothrombin complex concentrates versus fresh frozen plasma for warfarin reversal. A systematic review and meta-analysis. Thromb Haemost. 2016; 116: 879–890.
418. Schwartz J, Padmanbhan A, Aqui N, et al. Guidelines on the use of therapeutic apheresis in clinical practice — evidence-based approach from the writing committee of the American Society for Apher- esis: the Seventh Special Issue. J Clin Apher. 2016.
419. Mainou M, Alahdab F, Tobian AA, et al. Reducing the risk of transfusion-transmitted cytomegalovirus infection: a systematic review and meta-analysis. Transfusion. 2016; 56: 1569–1580.
420. Estcourt LJ, Malouf R, Hopewell S, et al. Pathogen-reduced platelets for the prevention of bleeding. Cochrane Database Syst Rev. 2017; 7: CD009072.
421. Scharman CD, Burger D, Shatzel JJ, et al. Treatment of individuals who cannot receive blood products for religious or other reasons. Am J Hematol. 2017; 92: 1370–1381.
422. Torlon J, Ringdon O, Garming-Legert K, et al. A prospective randomized trial comparing cyclosporine/ methotrexate and tacrolimus/sirolimus as graft-versus-host disease prophylaxis after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. Haematologica. 2016; 101: 1417–1425.
423. Li D, Wang L, Zhu H, et al. Efficacy of allogeneic hematopoietic stem cell transplantation in intermediate-risk acute myeloid leukemia adult patients in first complete remission: a meta-analysis of prospective studies. PLoS ONE. 2015; 10: 1–16.
424. Kroger N, Iacobelli S, Franke GN, et al. Dose-reduced versus standard conditioning followed by allogeneic stem-cell transplantation for patients with myelodysplastic syndrome: a prospective randomized phase III study of the EBMT (RICMAC Trial). J Clin Oncol. 2017; 35: 2157–2164.
425. Berinstein NL, Bhella S, Pennell NM, et al. Prolonged clinical remissions in patients with relapsed or refractory follicular lymphoma treated with autologous stem cell transplantation incorporating rituximab. Ann Hematol. 2015; 94: 813–823.
426. Le Gouill S, Thieblemont C, Oberic L, et al. Rituximab after autologous stem-cell transplantation in mantle-cell lymphoma. N Engl J Med. 2017; 377: 1250–1260.
427. Sullivan KM, Goldmuntz EAS, Keyes-Elstein L, et al; SCOT Study Investigators. Myeloablative autologous stem-cell transplantation for severe scleroderma. N Engl J Med. 2018; 378: 35–47.
428. Marty FM, Ljungman P, Chemaly RF, et al. Letermovir prophylaxis for cytomegalovirus in hematopoietic-cell transplantation. N Engl J Med. 2017; 377: 2433–2444.
429. Winston DJ, Mullane KM, Cornely OA, et al. Inactivated varicella zoster vaccine in autologous haemopoietic stem-cell transplant recipients: an international, multicentre, randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet. 2018; 391: 2116–2127.
430. Chabannon C, KuballJ, Bondanza A, et al. Hematopoietic stem cell transplantation in its 60s: a platform for cellular therapies. Sci Transl Med. 2018; 10: 1–11.
431. Grigor EJM, Fergusson D, Kekre N, et al. Risks and benefits of chimeric antigen receptor t-Cell (CAR-T) therapy in cancer: a systematic review and meta-analysis. Transfus Med Rev. 2019. [Epub ahead of print.]
432. Balassa K, Danby R, Rocha V. Haematopoietic stem cell transplants: principles and indications. Br J Hosp Med (Lond). 2019; 80: 33–39.
433. Moreno DF, Cid J. Graft-versus-host disease. Med Clin (Barc). 2019; 152: 22–28.
434. Zeiser R, Blazar BR. Acute graft-versus-host disease—biologic process, prevention, and therapy. N Engl J Med. 2017; 377: 2167–2179.
435. Zeiser R, Blazar BR. Pathophysiology of chronic graft-versus-host disease and therapeutic targets. N Engl J Med. 2017; 377: 2565–2579.
436. Lavi N, Rowe JM, Zuckerman T. Allogeneic stem-cell transplantation for myelofibrosis. Curr Opin Hematol. 2017; 24: 475–480.
437. Shah N, Callander N, Ganguly S, et al; American Society for Blood and Marrow Transplantation. Hematopoietic stem cell transplantation for multiple myeloma: guidelines from the American Society for Blood and Marrow Transplantation. Biol Blood Marrow Transplant. 2015; 21: 1155–1166.
438. Kumar R, Bonfim C, George B. Hematopoietic cell transplantation for aplastic anemia. Curr Opin Hematol. 2017; 24: 509–514.
439. Strocchio L, Locatelli F. Hematopoietic stem cell transplantation in thalassemia. Hematol Oncol Clin North Am. 2018; 32: 317–328.
440. Meier ER, Johnson T, Pinkney K, et al. Access to hematopoietic stem cell transplant for patients with sickle cell anemia. Pediatr Blood Cancer. 2018; 65: 1–15.
441. Bhatia S, Armenian SH, Landier W. How I monitor long-term and late effects after blood or marrow transplantation. Blood. 2017; 130: 1302–1314.
442. Paczesny S. Biomarkers for posttransplantation outcomes. Blood. 2018; 131: 2193–2204.
443. Ozdemir ZN, Civriz Bozdag S. Graft failure after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. Transfus Apher Sci. 2018; 57: 163–167.
444. Cornell RF, Hari P, Drobyski WR. Engraftment syndrome after autologous stem cell transplantation: an update unifying the definition and management approach. Biol Blood Marrow Transplant. 2015; 21: 2061–2068.
445. Bergeron A. Late-onset pulmonary complications after allogeneic hematopoietic stem cell transplantation. Clin Chest Med. 2017; 38: 249–262.
446. Ando M. An overview of kidney disease following hematopoietic stem cell transplantation. Intern Med. 2018; 57: 1503–1508.
447. Danylesko I, Shimoni A. Second malignancies after hematopoietic stem cell transplantation. Curr Treat Options Oncol. 2018; 19: 1–17.
448. Dierickx D, Haberman TM. Post-transplantation lymphoproliferative disorders in adults. N Engl J Med. 2018; 378: 549–562.

Труды отечественных авторов при подготовке статей по терапии для пользователей сайта - не использовались, так как их вы всегда можете найти в библиотеках.

- Вернуться в оглавление раздела "Терапия"

Редактор: Искандер Милевски. Дата обновления публикации: 11.2.2025