В статьях на сайте использованы следующие сокращения:

• °F — температура по Фаренгейту
• °C — температура по Цельсию
• 5-НТ — 5-гидроксииндолуксусная кислота мочи
• АБ — антибиотик(и)
• АБЛА — аллергический бронхолегочный аспергиллез
• АБТ — антибактериальная терапия
• АВ — атриовентрикулярный
• АГ — артериальная гипертензия
• АГн — антиген
• АД — артериальное давление
• АДГ — антидиуретический гормон
• АДС — анатоксин дифтерийно-столбнячный
• АДС-М — анатоксин дифтерийно-столбнячный (малые дозы)
• АДФ — аденозиндифосфорная кислота, аденозиндифосфат
• АКДС — анатоксин коклюшно-дифтерийно-столбнячный
• АКТГ — адренокортикотропный гормон
• АКШ — аортокоронарное шунтирование
• АЛТ — аланинаминотрансфераза
• амер. — американский
• АМК — азот мочевины крови
• АМФ — аденозинмонофосфорная кислота, аденозинмонофосфат
• АНА — антинуклеарные антитела
• анат. — анатомический
• англ. — английский
• АНЦА — антинейтрофильные цитоплазматические антитела
• АПФ — ангиотензин-превращающий фермент
• АРВТ — антиретровирусная терапия
• АРП — активность ренина в плазме крови
• АСК — аминосалициловая кислота
• ACT — аспартатаминотрансфераза
• АТл — антитело
• АТФ — аденозинтрифосфорная кислота, аденозинтрифосфат
• АуД — аутосомно-доминантный
• АуР — аутосомно-рецессивный
• АФП — α-фетопротеин
• АФС — антифосфолипидный синдром
• АХЭ — ацетилхолинэстераза
• АЦХ — ацетилхолин
• АЧТВ — активированное частичное тромбопластиновое время
• БА — бронхиальная астма
• БАД — биологически активная добавка
• БАЛ — бронхоальвеолярный лаваж
• БАР — биполярное аффективное расстройство (I или II типа)
• БКК — большой круг кровообращения
• БЛНПГ — блокада левой ножки пучка Гиса
• БМСЭ — бюро медико-социальной экспертизы
• БП — брюшная полость
• БПНПГ — блокада правой ножки пучка Гиса
• БРА — блокатор рецепторов ангиотензина
• БРМ — базовые реанимационные мероприятия
• БРНС — быстро разрешившееся необъяснимое событие
• БЦЖ — бацилла Кальметта-Герена
• в т.ч. — в том числе
• в. — век
• в/ — внутри... в сложносоставных словах (напр.
• в/сосудистый, в/черепной и т.п.)
• в/а — внутриартериально
• в/в — внутривенно
• в/к — внутрикожно
• в/м — внутримышечно
• вв. — века
• в-во — вещество
• ВВЭ — военно-врачебная экспертиза
• ВГД — внутриглазное давление
• ВГЧ — вирус герпеса человека
• ВДП — верхние дыхательные пути
• ВЖК — внутрижелудочковое кровоизлияние
• ВЗК — воспалительные заболевания кишечника
• ВЗОМТ — воспалительные заболевания органов малого таза
• ВИП — вазоактивный интестинальный пептид
• ВИЧ — вирус иммунодефицита человека
• ВМП — высокотехнологичная медицинская помощь
• ВМС — внутриматочное средство (спираль)
• ВН — вирусная нагрузка
• ВНС — вегетативная нервная система
• ВОВ — Великая Отечественная война
• ВОГМ — высокогорный отек головного мозга
• ВОЗ — Всемирная организация здравоохранения
• ВОЛ — высокогорный отек легких
• ВОМК — врач, осуществляющий медицинский контроль
• ВОП — врач общей практики
• ВПВ — верхняя полая вена
• ВПГ — вирус простого герпеса
• ВПР — врожденные пороки развития
• ВПС — врожденный порок сердца
• ВПЧ — вирус папилломы человека
• ВРТ — вспомогательные репродуктивные технологии
• ВСО — водно-солевой обмен
• ВЧД — внутричерепное давление
• ВЧИВЛ — высокочастотная искусственная вентиляция легких (HFV)
• ВЭБ — вирус Эпштейна-Барр
• г — грамм
• г. — год
• Г-6-ФД — глюкозо-6-фосфатдегидрогеназа
• ГАМК — гамма-аминомасляная кислота
• ГБ — гипертоническая болезнь
• ГБН — гемолитическая болезнь новорожденного
• ГБО — гипербарическая оксигенация
• ГГПТ — γ-глутамилтранспептидаза
• ГЗТ — гиперчувствительность замедленного типа
• гист. — гистологический
• ГК — грудная клетка
• ГКМП — гипертрофическая кардиомиопатия
• ГКС — глюкокортикостероид(ы)
• ГЛГ — гемофагоцитарный лимфогистиоцитоз
• ГЛПС — геморрагическая лихорадка с почечным синдромом
• ГМ — головной мозг
• ГМ-КСФ — гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор
• ГМФ — гуанозинмонофосфат
• ГнРГ — гонадотропин-рилизинг-гормон
• ГНТ — гиперчувствительность немедленного типа
• ГПОД — грыжа пищеводного отверстия диафрагмы
• ГРДС — гипоксическая реакция дыхательной системы
• греч. — греческий
• ГТФ — гуанозинтрифосфат
• ГУС — гемолитико-уремический синдром
• Гц — герц
• ГЭБ — гематоэнцефалический барьер
• ГЭР — гастроэзофагеальный рефлюкс
• ГЭРБ — гастроэзофагеальная рефлюксная болезнь
• дБ — децибел
• ДВС — диссеминированное внутрисосудистое свертывание
• ДГПЖ — доброкачественная гиперплазия предстательной железы
• ДГТ — дигидротестостерон
• ДД — дифференциальная диагностика, дифференциально-диагностический
• ДДБА — длительно действующие β₂-агонисты
• ДДК — дифференциально-диагностический критерий (критерии)
• ДИ — доверительный интервал
• ДК — диагностический критерий
• ДКА — диабетический кетоацидоз
• ДКМП — дилатационная кардиомиопатия
• ДМЖП — дефект межжелудочковой перегородки
• ДМПП — дефект межпредсердной перегородки
• ДМС — добровольное медицинское страхование
• ДН — дыхательная недостаточность
• ДНК — дезоксирибонуклеиновая кислота
• ДНТ — дефекты нервной трубки
• ДОФА — дигидроксифенилаланин
• ДП — дыхательные пути
• ДПК — двенадцатиперстная кишка
• ДПМ — дата последней менструации
• ДПП — давление в правом предсердии
• др. — другие
• ДТП — дорожно-транспортное происшествие
• ДЦП — детский церебральный паралич
• ЕД — единица действия
• ЖВП — желчевыводящие пути
• ЖДА — железодефицитная анемия
• ЖЕЛ — жизненная емкость легких
• ЖКБ — желчекаменная болезнь
• ЖКК — желудочно-кишечное кровотечение
• ЖКТ — желудочно-кишечный тракт
• ЖНВЛП — жизненно необходимые и важные лекарственные препараты (список, перечень)
• ЖТ — желудочковая тахикардия
• ЗВУР — задержка внутриутробного развития
• ЗЛ — здоровые люди (лица)
• ЗНО — злокачественное новообразование
• ЗО — здравоохранение
• ЗОЖ — здоровый образ жизни
• ЗСН — застойная сердечная недостаточность
• иАПФ — ингибиторы ангиотензин-превращающего фермента
• ИБС — ишемическая болезнь сердца
• ИВЛ — искусственная вентиляция легких
• ИГКС — ингаляционные глюкокортикостероиды
• ИЗЛ — интерстициальные заболевания легких
• ИКД — имплантируемый кардиовертер-дефибриллятор
• ИКП — иммунокомпрометированные пациенты
• ИЛ — интерлейкин
• ИЛДБ — интегрированное лечение детских болезней
• ИМ — инфаркт миокарда
• ИМАО — ингибитор(ы) моноаминоксидазы
• ИМбпБТ — инфаркт миокарда без подъема сегмента ST
• ИМП — инфекция мочевых (мочевыводящих) путей
• ИМпST — инфаркт миокарда с подъемом сегмента ST
• ИМТ — индекс массы тела
• ИОЛ — интраокулярная линза
• ИПП — ингибиторы протонной помпы (протонного насоса)
• ИППП — инфекции, передаваемые половым путем
• ИСС — индивидуальные спасательные средства
• истор. — историческое
• итал. — итальянский
• ИТП — идиопатическая тромбоцитопеническая пурпура
• ИТШ — инфекционно-токсический шок
• ИФА — иммуноферментный анализ
• КА — коронарная(ые) артерия(и)
• КАГ — коронарография
• КБМП - качество и безопасность медицинской помощи
• кВ — киловольт
• кг — килограмм
• КДБА — короткодействующие β2-агонисты
• КДД — конечно-диастолическое давление
• КДО — конечно-диастолический объем
• КДР — конечно-диастолический размер
• кит. — китайский
• ккал — килокалория
• кл. — клетки, клеток
• КМП — качество медицинской помощи
• КоА — коэнзим А, кофермент А
• КОЕ — колониеобразующая единица
• КОК — комбинированные оральные контрацептивы
• КПТ — когнитивно-поведенческая терапия
• КР — клинические рекомендации
• КСД — конечно-систолическое давление
• КСО — конечно-систолический объем
• КСР — конечно-систолический размер
• КТ — компьютерная томография
• КТВР — компьютерная томография высокого разрешения
• КТГ — кардиотокография
• КФК — креатинфосфокиназа
• КЩС — кислотно-щелочное состояние
• л — литр
• л/о — ложноотрицательный
• л/п — ложноположительный
• ЛА — легочная артерия
• ЛАГ — легочная артериальная гипертензия лат. — латинский
• ЛГ — лютеинизирующий гормон
• ЛДГ — лактатдегидрогеназа
• ЛЖ — левый желудочек
• ЛОР — имеющий отношение к оториноларингологии (ЛОР-врач, ЛОР-органы)
• ЛП — лекарственный препарат
• ЛПВП — липопротеины высокой плотности
• ЛПНП — липопротеины низкой плотности
• ЛПОНП — липопротеины очень низкой плотности
• ЛПУ — лечебно-профилактическое учреждение ЛС — лекарственное средство
• ЛУ — лимфатический(ие) узел(лы)
• ЛФК — лечебная физкультура
• м.б. — может (мог, могут, могли) быть
• М/Ж — соотношение мужчин и женщин
• максД — максимальная доза
• максНД — максимальная начальная доза
• максРД — максимальная разовая доза
• максСД — максимальная суточная доза
• МАНК — метод амплификации нуклеиновых кислот
• МАО — моноаминоксидаза
• МВП — мочевыводящие пути
• мг — миллиграмм
• МДБ — мышечная дистрофия Беккера
• МДД — мышечная дистрофия Дюшенна
• МДМА — метилендиоксиметамфетамин
• ME — международная единица
• мед. — медицинский
• мес — месяц
• МЖ — молочная железа
• МЖП — межжелудочковая перегородка
• М3 — министерство здравоохранения
• мин — минут(а)
• минД — минимальная доза
• минСД — минимальная суточная доза
• МКБ — мочекаменная болезнь
• МКБ-10 — Международная классификация болезней 10-го пересмотра
• МКБ-11 —Международная классификация болезней 11-го пересмотра
• мкВ — микровольт
• мкг — микрограмм
• МКК — малый круг кровообращения
• мкл — микролитр
• мл — миллилитр
• млн — миллион
• млрд — миллиард
• мм — миллиметр
• мм рт.ст. — миллиметр ртутного столба
• ммоль — миллимоль
• МНН — международное непатентованное наименование
• МНО — международное нормализованное отношение
• МО — медицинская организация
• МП — медицинская помощь
• МПС — мочеполовая система
• МР — магнитно-резонансный
• МР-венография — МРТ вен и синусов головного мозга мРНК — матричная РНК
• МРТ — магнитно-резонансная томография
• МРХПГ — магнитно-резонансная холангиопанкреатография
• мс — миллисекунда
• МСКТ — мультиспиральная компьютерная томогра-
• фия
• МСЭ — медико-социальная экспертиза
• МТ — масса тела
• мтДНК — митохондриальная дезоксирибонуклеиновая кислота
• МТР — масса тела при рождении
• н.э. — нашей эры
• НА — нервная анорексия
• НАД — никотинамидадениндинуклеотид
• НАДН — никотинамидадениндинуклеотид (восстановленный)
• НАДФ — никотинамидадениндинуклеотидфосфат
• НАЖБП — неалкогольная жировая болезнь печени напр. — например
• НАСГ — неалкогольный стеатогепатит
• НБ — нервная булимия
• НДО — негативный детский опыт
• нед — недели
• нем. — немецкий
• НИВЛ — неинвазивная вентиляция легких
• НЛР — нежелательная лекарственная реакция
• нм — нанометр
• НМГ — низкомолекулярный гепарин
• НМИЦ — национальный медицинский исследовательский центр
• НМП — неотложная медицинская помощь
• НМТ — низкая масса тела
• НПА — нормативно-правовой акт
• НПВ — нижняя полая вена
• НПВС — нестероидные противовоспалительные средства
• НС — нервная система
• НСГ — нейросонография
• НЭК — некротический энтероколит
• НЯК — неспецифический язвенный колит
• ОАК — общий анализ крови
• ОАМ — общий анализ мочи
• ОАП — открытый артериальный проток
• ОБП — органы брюшной полости
• ОГБ — острая горная болезнь
• ОГМ — отек головного мозга
• ОДН — острая дыхательная недостаточность
• ОДП — обструкция дыхательных путей
• ОЖСС — общая железосвязывающая способность сыворотки
• ОЗ — организация здравоохранения
• ок. — около
• ОКР — обсессивно-компульсивное расстройство
• ОКС — острый коронарный синдром
• ОЛЛ — острый лимфобластный лейкоз
• ОМП - оказание медицинской помощи
• ОМС — обязательное медицинское страхование
• ОМТ — органы малого таза
• ОНМК — острое нарушение мозгового кровообращения
• ОНМП — отделение неотложной (медицинской) помощи
• ОНМТ — очень низкая масса тела
• ООЗ — органы (организации/управления) здравоохранения
• ООЛ — остаточный объем легких
• ООН — Организация Объединенных Наций
• ОПЖ — ожидаемая продолжительность жизни
• ОПН — острая почечная недостаточность
• ОПП — острое повреждение почек
• ОПСС — общее периферическое сосудистое сопротивление
• ОРВИ — острая респираторная вирусная инфекция
• ОРДС — острый респираторный дистресс-синдром
• ОРЗ — острое респираторное заболевание
• ОРИТ — отделение реанимации и интенсивной терапии (ICU)
• ОСВО — общее содержание воды в организме
• ОФВ — объем форсированного выдоха
• ОФВ₁ — объем форсированного выдоха за 1-ю секунду
• ОЦК — объем циркулирующей крови
• п.з. — поле зрения (микроскопа)
• п/к — подкожно
• ПАВ — психоактивные вещества
• ПВ — протромбиновое время
• ПВК — периферический венозный катетер
• ПВЛ — перивентрикулярная лейкомаляция
• Пг — простагландин
• ПГГ — программа государственных гарантий оказания гражданам РФ бесплатной медицинской помощи
• ПДКВ — положительное давление конца выдоха (PEEP)
• ПЖ — правый желудочек
• ПЖЖ — поджелудочная железа
• ПЖК — подкожная жировая клетчатка (гиподерма)
• ПКА — почечный канальцевый ацидоз
• ПКМД — поясно-конечностная мышечная дистрофия
• ПЛСГ — пятнистая лихорадка Скалистых гор
• ПМДР — предменструальное дисфорическое расстройство
• ПМК — пролапс митрального клапана
• ПМС — предменструальный синдром
• ПМСП — первичная медико-санитарная помощь
• ПНА — передняя нисходящая артерия
• ПНЖК — полиненасыщенные жирные кислоты
• ПОРИТ — педиатрическое отделение реанимации и интенсивной терапии
• ПОТ — постуральная ортостатическая тахикардия
• ППВ — пневмококковая полисахаридная вакцина
• ППОАК — прямые пероральные антикоагулянты ППТ — площадь поверхности тела
• ПСА — простатоспецифический антиген
• ПСВ — пиковая скорость выдоха
• ПСВХ — прогрессирующий семейный внутрипеченочный холестаз
• ПТ — психотерапия
• ПТВ — протромбиновое время
• ПТГ — паратиреоидный гормон
• ПТИ — протромбиновый индекс
• ПТСР — посттравматическое стрессовое расстройство
• ПФЭ — пищевой фолатный эквивалент
• ПЦР — полимеразная цепная реакция
• ПШГ — пурпура Шенлейна-Геноха
• ПЩЖ — паращитовидные железы
• ПЭТ — позитронно-эмиссионная томография р/ —раз в ... (с, мин, ч, сут и т.п.)
• РА — ревматоидный артрит
• РААС — ренин-ангиотензин-альдостероновая система
• разг. — разговорный
• разл. — различный
• РАС — расстройство аутистического спектра
• РДС — респираторный дистресс-синдром
• рим. — римский
• РИФ — реакция иммунофлюоресценции
• РКИ — рандомизированные клинические исследования
• РКМП — рестриктивная кардиомиопатия
• РИГА — реакция непрямой гемагглютинации
• РНК — рибонуклеиновая кислота
• РОГК — рентгенография (рентгенограмма) органов грудной клетки
• РОЛСНС — рекомендации по оценке и лечению при сортировке в неотложных ситуациях
• РИГА — реакция прямой гемагглютинации
• р-р — раствор
• р-ритель — растворитель
• РРК — рецепторы ретиноевой кислоты
• РРМ — расширенные реанимационные мероприятия
• РСВ — респираторно-синцитиальный вирус
• РСД — расстройство стереотипных движений
• РСК — реакция связывания комплемента
• РТГА — реакция торможения гемагглютинации
• РТНГА — реакция торможения непрямой гемагглютинации
• РФ — Российская Федерация
• РХР — ретиноевые Х-рецепторы
• РЧА — радиочастотная абляция
• РЭС — ретикулоэндотелиальная система
• с — секунда
• св-во — свойство
• СВДС — синдром внезапной детской смерти
• СГЯ — синдром гиперстимуляции яичников
• СД — сахарный диабет
• СД-1 — сахарный диабет 1 -го типа
• СД-2 — сахарный диабет 2-го типа
• СДВГ — синдром дефицита внимания и гиперактивности
• СЕ — субъединица
• СЖК — свободные жирные кислоты
• СЗСТ — системное(ые) заболевание(я) соединительной ткани
• СИЗ — средства индивидуальной защиты
• СИОЗС — селективный ингибитор обратного захвата серотонина
• СИОЗСН — селективные ингибиторы обратного захвата серотонина и норэпинефрина
• СКА — серповидно-клеточная анемия
• СКВ — серповидно-клеточная болезнь
• СКВ — системная красная волчанка
• СКФ — скорость клубочковой фильтрации
• СЛР — сердечно-легочная реанимация
• см — сантиметр
• см вод.ст. — сантиметр водяного столба
• СМЖ — спинномозговая жидкость
• СМИ — средства массовой информации
• СМО — страховая медицинская организация
• СМП — скорая медицинская помощь
• СМЭ — судебно-медицинская экспертиза
• СН — сердечная недостаточность
• СНСАДГ — синдром неадекватной секреции АДГ
• СОАС — синдром обструктивного апноэ сна (во сне)
• совр. — современный
• СОЭ — скорость оседания эритроцитов
• СПИД — синдром приобретенного иммунодефицита
• СПКЯ — синдром поликистозных яичников
• СПОН — синдром полиорганной недостаточности
• СРБ — С-реактивный белок
• СРК — синдром раздраженного кишечника
• СрСД — средняя суточная доза
• ССВ — синдром Стерджа-Вебера
• ССВР — синдром системной воспалительной реакции
• ССЗ — сердечно-сосудистые заболевания
• ССС — сердечно-сосудистая система
• СССУ — синдром слабости синусового узла
• СТ — Синдром Туретта
• СТГ — соматотропный гормон
• СТР — стойкое (хроническое) моторное или вокальное тикозное расстройство
• сут — сутки
• СХУ — синдром хронической усталости
• т.д. — так далее
• т.е. — то есть
• т.к. — так как
• т.о. — таким образом
• т.п. — тому подобное
• Т3 — трийодтиронин
• Т4 — тироксин
• ТАНК — тест амплификации нуклеиновых кислот
• ТБС — тазобедренный сустав
• ТГВ — тромбоз глубоких вен
• ТГСК — трансплантация гемопоэтических стволовых клеток
• ТИА — транзиторная ишемическая атака
• ТИАБ — тонкоигольная аспирационная биопсия
• ТМО — твердая мозговая оболочка
• TH — торговое наименование лекарственных средств
• ТПГГ — территориальная программа государственных гарантий оказания гражданам РФ бесплатной медицинской помощи
• ТПМ — травматическое повреждение мозга
• ТТ — температура тела
• ТТГ — тиреотропный гормон
• ТФР — трансформирующий фактор роста
• ТЦА — трициклические антидепрессанты
• тыс. — тысяча
• ТЭД —транзиторная эритробластопения детского возраста
• ТЭЛА — тромбоэмболия легочной артерии
• ТЭО — тромбоэмболические осложнения
• УЗДС — ультразвуковое дуплексное сканирование
• УЗИ — ультразвуковое исследование
• устар. — устаревший
• УФ — ультрафиолетовый
• УФО — ультрафиолетовое облучение
• ФАП — фельдшерско-акушерский пункт
• ФВ — фракция выброса
• ФВД — функции внешнего дыхания
• ФЖ — фибрилляция желудочков
• ФЖЕЛ — форсированная жизненная емкость легких
• ФЗ — Федеральный закон
• физиол. — физиологический
• ФК — функциональный класс
• ФКС — фиброколоноскопия
• ФКУ — фенилкетонурия
• ФН — физическая нагрузка
• ФНО — фактор некроза опухоли
• ФОМС — федеральный фонд обязательного медицинского страхования
• ФОС — фосфорорганические соединения
• ФП — фибрилляция предсердий
• фр. — французский
• ФСГ — фолликулостимулирующий гормон
• ФСГС — фокально-сегментарный гломерулосклероз
• ФЭГДС — фиброэзофагогастродуоденоскопия
• ХБП — хроническая болезнь почек
• ХГЧ — хорионический гонадотропин человека
• ХДН — хроническая дыхательная недостаточность
• хим. — химический
• ХНЗЛ — хронические неспецифические заболевания легких
• ХОБЛ — хроническая обструктивная болезнь легких
• ХПН — хроническая почечная недостаточность
• ХС — холестерин
• ХСН — хроническая сердечная недостаточность
• XT — химиотерапия
• ЦВД — центральное венозное давление
• ЦБК — центральный венозный катетер
• ЦИК — циркулирующие иммунные комплексы
• ЦМВ — цитомегаловирус
• ЦНС — центральная нервная система
• ЦОГ — циклооксигеназа
• ЦПД — церебральное перфузионное давление
• ЦСТС — церебральный сольтеряющий синдром
• ч — час
• ЧД — частота дыхания
• ЧДД — частота дыхательных движений
• ЧКВ — чрескожное коронарное вмешательство
• ЧМН — черепно-мозговые нервы
• ЧМТ — черепно-мозговая травма
• ЧН — черепные нервы
• ЧС — чувствительность/специфичность (ЧС 97%/87%)
• ЧСС — частота сердечных сокращений
• ЧТВ — частичное тромбопластиновое время
• ШКГ — шкала комы Глазго
• ШОП — шейный отдел позвоночника
• ЩЖ — щитовидная железа
• ЩФ — щелочная фосфатаза
• ЭАР — эквивалент активности ретинола
• ЭГДС — эзофагогастродуоденоскопия
• ЭДТА — этилендиаминтетрауксусная кислота (этилендиаминтетраацетат)
• ЭКГ — электрокардиография
• ЭКМО — экстракорпоральная мембранная оксигенация
• ЭКО — экстракорпоральное оплодотворение
• ЭКС — электрокардиостимулятор, элекгрокардиостимуляция
• ЭМГ — электромиография
• ЭМК — электронная медицинская карта
• ЭМП — экстренная медицинская помощь
• ЭНМП — экстренная и неотложная медицинская помощь
• ЭНМТ — экстремально низкая масса тела
• ЭРХПГ —эндоскопическая ретроградная холангиопанкреатография
• ЭТТ — эндотрахеальная трубка
• ЭхоКГ — эхокардиография
• ЭЭГ — электроэнцефалография
• ЮДМ — ювенильный дерматомиозит
• ЮИА — ювенильный идиопатический артрит
• ЯБ — язвенная болезнь
• АА — амилоид A (amyloid А)
• ААР — Американская академия педиатрии (American Academy of Pediatrics)
• AASLD — Американская ассоциация по изучению заболеваний печени (American Association for the Study of Liver Diseases)
• ABC — алгоритм неотложной помощи «дыхательные пути-дыхание-кровообращение» (Airways-Breathing-Circulation)
• АВСАЗ — белковый член АТФ-связывающей кассеты АЗ
• АВСВ11 —ген АТФ-связывающей кассеты, 11-й член подсемейства В (ATP-binding cassette, subfamily В member 11)
• АВСВ4 — ген АТФ-связывающей кассеты, 4-й член подсемейства В (ATP-binding cassette 4 gene)
• АВСС2 — ген, кодирующий 2-й член подсемейства С АТФ-связывающих кассет (ATP-binding cassette sub-family С member 2)
• ABCDE — алгоритм неотложной помощи «дыхательные пути-дыхание-кровообращение-не-врологический статус-внешний вид» (Airways-Breathing-Circulation-Disability-Exposure)
• ABCG5/G8 — гетеродимер переносчика АТФ-связывающей кассеты ABCG5 и ABCG8 (heterodimer of ATP-binding cassette transporter ABCG5 and ABCG8)
• AC — до еды (при назначениях) — ante cibum
• АСЕР — Американская коллегия врачей неотложной помощи (American College of Emergency Physicians)
• ACOG — Американская коллегия акушеров и гинекологов (American College of Obstetricians and Gynecologists)
• AHA — Американская кардиологическая ассоциация (American Heart Association)
• ALTE — очевидное опасное для жизни событие (apparent life-threatening event)
• ANP — предсердный натрийуретический пептид (atrial natriuretic peptide)
• APLS — курсы расширенных реанимационных мероприятий в педиатрии, спонсируемые Американской академией педиатрии и Американской коллегией врачей неотложной помощи (Advanced Pediatric Life Support)
• ARPKD — аутосомно-рецессивный поликистоз почек ASCVD-риск — риск развития атеросклеротического сердечно-сосудистого заболевания (Arteriosclerotic Cardiovascular Disease)
• AVPU — шкала для оценки уровня сознания («в ясном сознании»; «реакция на вербальные раздражители»; «реакция на боль»; «без сознания») (alert, verbal, pain, unresponsive)
• BCS — митохондриальный шаперон BCS1 (mitochondrial chaperone BCS1)
• BIN — биноминальная номенклатура живой природы
• B(i)PAP — режим искусственной вентиляции легких с двумя уровнями положительного давления (bilevel positive airway pressure)
• BNP — мозговой натрийуретический пептид В-типа [В (brain)-type natriuretic peptide]
• BRUE — быстро разрешившиеся необъяснимые события (brief resolved unexplained events)
• BSEP — насос выведения солей желчных кислот (bile salt export pump)
• CADASIL — церебральная аутосомно-доминантная артериопатия с подкорковыми инфарктами и лейкоэнцефалопатией (cerebral autosomal dominant arteriopathy with subcortical infarcts and leukoencephalopathy)
• CAPS — криопирин-ассоциированный периодический синдром (cryopyrin-associated periodic syndrome)
• CBIT — комплексное поведенческое воздействие при тиках (comprehensive behavioral intervention for tics)
• CD — кластеры дифференцировки (clusters of differentiation)
• CDC — Центр по контролю и профилактике заболеваний, США (Center for Disease Control and Prevention)
• CDG — врожденные нарушения гликозилирования (congenital disorder of glycosylation)
• CFTR — трансмембранный регулятор муковисцидоза (cystic fi brosis transmembrane regulator)
• CH — гемолитический комплемент (hemolytic complement)
• CLLS — шкала оценки острой горной болезни озера Луиз у детей (Children’s Lake Louise Score)
• сМОАТ — каналикулярный мультиспецифический органический анионный транспортер (canalicular multispecific organic anion transporter)
• CMT — Шарко-Мари-Тута болезнь (Charcot-Marie-Tooth disease)
• CPAP — постоянное положительное давление в дыхательных путях (constant positive airway pressure)
• CTLA — цитотоксический Т-лимфоцитарный антиген (cytotoxic T-lymphocytic antigen)
• CYP — цитохром общий
• DAF — фактор ускорения распада (decay-accelerating factor)
• DAMP — рецепторы молекулярного фрагмента, ассоциированного с повреждением (damage-associated molecular pattern)
• DASH — диетические подходы к борьбе с гипертонией (dietary approaches to stop hypertension)
• DGAT1 — диацилглицерин-1-ацилтрансфераза (diacylglycerol acyltransferase 1)
• DHR — дигидрородамин (dihydrorhodamine)
• DSM — Диагностическое и статистическое руководство по психическим расстройствам (Diagnostic and Statistical Manual of Mental Disorders)
• EAST syndrome — эпилепсия, атаксия, сенсоневральная тугоухость и тубулопатия (epilepsy, ataxia, sensorineural hearing loss, and tubulopath)
• EBM — доказательная медицина (evidance based medicine)
• EPCAM — молекула адгезии эпителиальных клеток (epithelial cell adhesion molecule)
• ESC — Европейское общество кардиологии (European Society of Cardiology)
• EXIT — лечение плода вне матки во время родов (ех utero intrapartum treatment)
• FcRs — Fc-рецепторы — белок, расположенный на поверхности нескольких видов клеток иммунной системы (естественных киллеров, макрофагов, нейтрофилов и тучных клеток) FDA — Комитет по контролю за лекарственными веществами и пищевыми добавками, США (Food and Drug Administration)
• FFR — фракционный резерв кровотока (fractional flow reserve)
• FGF-23 — фактор роста фибробластов-23 (fibroblast growth factor-23)
• FIC 1 —семейный внутрипеченочный холестаз 1-го типа, болезнь Байлера (familial intrahepatic cholestasis)
• FiO₂ — фракция кислорода (во вдыхаемом воздухе, газовой смеси)
• FISH — флуоресцентная in situ гибридизация (fluorescence in situ hybridization)
• FLAIR — восстановление инверсии с ослаблением жидкости (fluid-attenuated inversion recovery)
• FMF — семейная средиземноморская лихорадка (familial mediterranean fever)
• FODMAP — ферментируемые олиго-, ди-, моносахариды и полиолы (fermentable oligo-, di-, monosaccharides and polyols)
• FoxP3 —транскрипционный фактор семейства Forkhead Р3
• GATA — gata-связывающий белок
• DVL — трансплантат против лейкоза (graft versus leukemia)
• HADH — гидроксилацил-КоА-дегидрогеназа (Hydroxyacyl-Coenzyme A dehydrogenase)
• HAV — вирус гепатита В (hepatitis A virus)
• Hb — гемоглобин
• HBcAg — сердцевинный антиген вируса гепатита В HBeAg — антиген вируса гепатита В
• HBsAg — поверхностный антиген вируса гепатита В
• HBV — вирус гепатита В (hepatitis В virus)
• HCV — вирус гепатита С (hepatitis С virus)
• HDV — вирус гепатита D (hepatitis D virus)
• HELLP — HELLP-синдром (гемолиз, повышенный уровень печеночных ферментов, низкий уровень тромбоцитов) (hemolysis, elevated liver enzymes, low platelets)
• HEV — вирус гепатита E (hepatitis E virus)
• HFNC — назальные канюли высокого потока (heated, high-flow nasal cannula)
• Hib — гемофильная палочка типа В (Haemophilus influenzae В type)
• HLA — лейкоцитарные антигены (главного комплекса гистосовместимости) человека (human leukocyte antigens)
• HR — отношение рисков (hazard ratio)
• HRT — терапия отмены привычки (habit reversal therapy)
• Ht — гематокрит
• HTLV — Т-лимфотропный вирус человека (human T-lymphotropic virus)
• IFN — интерферон
• Ig — иммуноглобулин
• IgA — иммуноглобулин A
• IgE — иммуноглобулин E
• IgG — иммуноглобулин G
• IgM — иммуноглобулин M
• IL — интерлейкин
• IPEX — Х-сцепленный синдром иммунной дисрегуляции, полиэндокринопатии и энтеропатии (immunedysregulation polyendocrinopathy enteropathy, X-linked)
• IQ — коэффициент умственного развития (intelligence quotient)
• JAK — янус-киназа (janus kinase)
• LFA — антиген, активирующий функцию лейкоцитов (lymphocyte function-associated antigen)
• LT — лейкотриен
• MALT — лимфоидная ткань слизистой оболочки (mucosa-associated lymphoid tissue)
• MASP — МСЛ-ассоциированная сериновая протеаза (MBL-associated serine protease)
• MBL — маннозосвязывающий лектин (mannose-binding lectin)
• MCP — мембранный белок-кофактор (membrane cofactor protein)
• MDR3 — белок множественной лекарственной устойчивости 3 (multidrug resistance protein 3)
• MELAS — митохондриальная энцефалопатия, лактоацидоз и инсультоподобные эпизоды (mitochondrial encephalomyopathy, lactic acidosis, and stroke-like episodes)
• MELD — модель для оценки терминальной стадии заболеваний печени, предназначена для оценки относительной тяжести заболевания и прогноза жизни у пациентов с терминальной стадией печеночной недостаточности (ожидающих трансплантации печени) (model for end-stage liver disease)
• MERRF — миоклоническая эпилепсия с рваными красными волокнами (myoclonic epilepsy with ragged red fibers)
• MHC — главный комплекс гистосовместимости (major histocompatibility complex)
• Mr — кажущаяся молекулярная масса
• MRP — белок с множественной лекарственной устойчивостью (multidrug-resistant protein)
• MRSA — метициллинрезистентный золотистый стафилококк
• MSSA — метициллинчувствительный золотистый стафилококк
• mTOR — мишень рапамицина у млекопитающих (mammalian target of rapamycin)
• NB! — важно, обратить внимание (nota bene)
• NICE — Национальный институт здоровья и клинического совершенствования (качества медицинской помощи) Великобритании (National Institute for Health and Clinical Excellence)
• NK — естественные клетки-киллеры (natural killer) NMDA — И-метил-В-аспартат (N-methyl-D-aspartate)
• NNT — число больных, которых необходимо пролечить, чтобы достичь какого-то указанного эффекта (number need to treatment)
• OR — отношение шансов (odds ratio)
• paCO₂ — парциальное давление углекислого газа в артериальной крови
• PALS — курсы расширенных реанимационных мероприятий в педиатрии (Pediatric Advanced Life Support)
• PANDAS — аутоиммунное нейропсихиатрическое расстройство в детском возрасте, ассоциированное со стрептококковой инфекцией (pediatric autoimmune neuropsychiatric disorder associated with streptococcal infection)
• PANS — острый нейропсихиатрический синдром в детском возрасте (pediatric acute-onset neuropsychiatric syndrome)
• paO₂ — парциальное давление кислорода в артериальной крови
• PAS — фуксинсернистая кислота, реактив Шиффа (periodic acid-Shiff)
• PC — после еды (при назначениях) (post cibum) рСО₂ — парциальное давление углекислого газа
• PCSK-9 — пропротеиновая конвертаза субтилизинкексинового типа 9 (proprotein convertase subtilisin/kexin type 9)
• PFAPA — периодическая лихорадка с афтозным стоматитом, фарингитом и лимфаденитом (periodic fevers with aphthous stomatitis, pharyngitis and adenitis)
• PFIC — семейный внутрипеченочный холестаз (familial intrahepatic cholestasis)
• Pg — простагландин
• pH — водородный показатель
• PIM — показатель летального исхода у детей (pediatric index of mortality)
• piO₂ — парциальное давление кислорода во вдыхаемом воздухе
• рО₂ — парциальное давление кислорода
• POLG — субъединица ДНК-полимеразы γ
• PRISA II — оценка риска госпитализации у детей II (pediatric risk of admission)
• PRISM — риск летального исхода у детей (pediatric risk of mortality)
• PRN — при (по) необходимости (pro re nata — при возникновении обстоятельств)
• PRSS — ген сериновой протеазы
• PS — примечание (post scriptum)
• PUVA-терапия — псорален-ультрафиолет А-терапия (psoralen and ultraviolet А)
• Q#H — каждые # часов (при назначениях) (quaque... hora)
• QAM — каждое утро (при назначениях) (quaque ante meridiem)
• QPM — каждый вечер (при назначениях) (quaque post meridiem)
• RAG — ген, активирующий рекомбиназу
• RePEAT — пересмотренный инструмент для оценки педиатрической неотложной медицинской помощи (Revised Pediatric Emergency Assessment Tool)
• RF — ревматоидный фактор
• Rh — резус(-фактор)
• Rh«-» — резус-отрицательн(ый)
• Rh«+» — резус-положительн(ый)
• ROHHAD — быстро развивающееся ожирение с дисфункцией гипоталамуса, гиповентиляцией и спонтанной дисрегуляцией (rapid-onset obesity with hypothalamic dysfunction, hypoventilation and autonomic dysregulation)
• ROMK — почечный наружный мозговой калиевый канал (renal outer medullary К)
• RR — относительный риск (relative risk или risk ratio)
• RW — реакция Вассермана (reaction of Wassermann)
• SaO₂ — сатурация артериальной крови кислородом
• SatO₂ — насыщение крови кислородом
• ScvO₂ — насыщение кислородом центральной венозной крови (central venous oxygen saturation)
• SD — стандартное отклонение (standart deviation)
• SFTPA — ген сурфактантного белка A
• SFTPB — ген сурфактантного белка В
• SFTPC — ген сурфактантного белка С
• SPINK — ингибитор сериновой протеазы (serine protease inhibitor kazal)
• SpO₂ — насыщение (сатурация) гемоглобина кислородом
• spp. — виды (при родовом имени микроорганизмов)
• Src. — источник информации, библиографическая ссылка (source)
• STAT1 — сигнальный преобразователь и активатор транскрипции 1 (signal transducer and activator of transcription)
• TA — Международная анатомическая терминология
• TCR — Т-клеточный рецептор (T-cell receptor)
• TIPS —трансъюгулярный внутрипеченочный портосистемный шунт; малоинвазивная хирургическая операция, проводимая под контролем рентгеноскопии (transjugular intrahepatic portosystemic shunt)
• TLR — Толл-подобный рецептор (Toll-like receptor)
• TNF — фактор некроза опухоли (tumor necrosis factor)
• TORCH — токсоплазмоз, краснуха, цитомегаловирусная инфекция, герпес и другие инфекции (toxoplasmosis, other infections, rubella, cytomegalovirus herpes simplex)
• TPM — мутация тропомиозина (mutation of the tropomyosin)
• TRAP — синдром обратной артериальной перфузии близнецов (twin reversed arterial perfusion)
• TRAPS — периодический синдром, ассоциированный с рецептором фактора некроза опухоли (tumor necrosis factor receptor-associated periodic syndrome)
• TRPM — катионный канал с транзиторным рецепторным потенциалом, подсемейство М (transient receptor potential cation channel, subfamily M)
• VEGF — фактор роста эндотелия сосудов (vascular endothelial growth factor)
• VO₂ — потребление кислорода
• WPW — синдром Вольфа-Паркинсона-Уайта (Wolff-Parkinson-White)
• XLA — Х-сцепленная агаммаглобулинемия (X-linked agammaglobulinemia)
• αDG-RD — дистрофии, связанные с α-дистрогликанами (alpha dystroglycan-related dystrophies)
• β-ХГЧ — β-субъединица хорионического гонадотропина человека

В ходе подготовки статей по реаниматологии в терапии для пользователей сайта МедУнивер использованы труды следующих авторов:

1. Goodacre S, Stevens JW, Pandor A, et al. Prehospital noninvasive ventilation for acute respiratory failure: systematic review, network meta-analysis, and individual patient data meta-analysis. Acad Emerg Med. 2014;21:960–970.
2. Lemiale V, Mokart D, Resche-Rigon M, et al. Effect of noninvasive ventilation vs oxygen therapy on mortality among immunocompromised patients with acute respiratory failure: a randomized clinical trial. JAMA. 2015;314:1711–1719.
3. Chu DK, Kim LH, Young PJ, et al. Mortality and morbidity in acutely ill adults treated with liberal versus conservative oxygen therapy (IOTA): a systematic review and meta-analysis. Lancet. 2018;391:1693–1705.
4. Frat JP, Thille AW, Mercat A, et al. High-flow oxygen through nasal cannula in acute hypoxemic respiratory failure. N Engl J Med. 2015;372:2185–2196.
5. Azoulay E, Lemiale V, Mokart D, et al. Effect of high-flow nasal oxygen vs standard oxygen on 28-day mortality in immunocompromised patients with acute respiratory failure: the HIGH randomized clinical trial. JAMA. 2018;320:2099-2107.
6. Cavalcanti AB, Suzumura EA, Laranjeira LN, et al. Effect of lung recruitment and titrated positive end-expiratory pressure (PEEP) vs low PEEP on mortality in patients with acute respiratory distress syndrome: a randomized clinical trial. JAMA. 2017;318:1335–1345.
7. Combes A, Hajage G, Capellier A, et al. Extracorporeal membrane oxygenation for severe acute respiratory distress syndrome. N Engl J Med. 2018;378:1965–1975.
8. Park SY, Kim HJ, Yoo KH, et al. The efficacy and safety of prone positioning in adults patients with acute respiratory distress syndrome: a meta-analysis of randomized controlled trials. J Thorac Dis. 2015;7:356–367.
9. Silversides JA, Major E, Ferguson AJ, et al. Conservative fluid management or deresuscitation for patients with sepsis or acute respiratory distress syndrome following the resuscitation phase of critical illness: a systematic review and meta-analysis. Intensive Care Med. 2017;43:155–170.
10. Narendra DK, Hess DR, Sessler CN, et al. Update in management of severe hypoxemic respiratory failure. Chest. 2017;152:867–879.
11. Vanoni NM, Carugati M, Borsa N, et al. Management of acute respiratory failure due to community-acquired pneumonia: a systematic review. Med Sci (Basel). 2019;7:1–10.
12. Nieman GF, Satalin J, Kollisch-Singule M, et al. Physiology in medicine: understanding dynamic alveolar physiology to minimize ventilator-induced lung injury. J Appl Physiol. 2017;122:1516–1522.
13. Ouellette DR, Patel S, Girard TD, et al. Liberation from mechanical ventilation in critically ill adults: an official American College of Chest Physicians/American Thoracic Society Clinical Practice Guideline: inspiratory pressure augmentation during spontaneous breathing trials, protocols minimizing sedation, and noninvasive ventilation immediately after extubation. Chest. 2017;151:166–180.
14. Matthay MA, McAuley DF, Ware LB. Clinical trials in acute respiratory distress syndrome: challenges and opportunities. Lancet Respir Med. 2017;5:524–534.
15. Bellani G, Laffey JG, Pham T, et al. Epidemiology, patterns of care, and mortality for patients with acuter distress syndrome in intensive care units in 50 countries. JAMA. 2016;315:788–800.
16. Pfeifer R, Heussen N, Michalewicz E, et al. Incidence of adult respiratory distress syndrome in trauma patients: a systematic review and meta-analysis over a period of three decades. J Trauma Acute Care Surg. 2017;83:496–506.
17. Thompson BT, Chambers RC, Liu KD. Acute respiratory distress syndrome. N Engl J Med. 2017;377:562–572.
18. Fan E, Brodie D, Slutsky AS. Acute respiratory distress syndrome: advances in diagnosis and treatment. JAMA. 2018;319:698–710.
19. Sweeney RM, McAuley DF. Acute respiratory distress syndrome. Lancet. 2016;388:2416–2430.
20. Fan E, Del Sorbo L, Goligher EC, et al. An official American Thoracic Society/European Society of Intensive Care Medicine/Society of Critical Care Medicine Clinical Practice Guideline: mechanical ventilation in adult patients with acute respiratory distress syndrome. Am J Respir Crit Care Med. 2017;195:1253–1263.
21. Cannon JW, Gutsche JT, Brodie D. Optimal strategies for severe acute respiratory distress syndrome. Crit Care Clin. 2017;33:259-275.
22. Abrams D, Brodie D. Extracorporeal membrane oxygenation for adult respiratory failure: 2017 update. Chest. 2017;38:655–666.
23. DesPrez K, McNeil JB, Wang C, et al. Oxygenation saturation index predicts clinical outcomes in ARDS. Chest. 2017;152:1151–1158.
24. Amato MB, Meade MO, Slutsky AS, et al. Driving pressure and survival in the acute respiratory distress syndrome. N Engl J Med. 2015;372:747–755.
25. Girardis M, Busani S, Damiani E, et al. Effect of conservative vs conventional oxygen therapy on mortality among patients in an intensive care unit: the oxygen-ICU randomized clinical trial. JAMA. 2016;316:1583–1589.
26. Chu DK, Kim LH, Young PJ, et al. Mortality and morbidity in acutely ill adults treated with liberal versus conservative oxygen therapy (IOTA): a systematic review and meta-analysis. Lancet. 2018;391:1693–1705.
27. Xu XP, Zhang XC, Hu SL, et al. Noninvasive ventilation in acute hypoxemic nonhypercapnic respiratory failure: a systematic review and meta-analysis. Crit Care Med. 2017;45:e727–e733.
28. Frat JP, Thille AW, Mercat A, et al. High-flow oxygen through nasal cannula in acute hypoxemic respiratory failure. N Engl J Med. 2015;372:2185–2196.
29. Reade MC, Eastwood GM, Bellomo R, et al. Effect of dexmedetomidine added to standard care on ventilator-free time in patients with agitated delirium: a randomized clinical trial. JAMA. 2016;315:1460–1468.
30. Young D, Harrison DA, Cuthbertson BH, et al. Effect of early vs late tracheostomy placement on survival in patients receiving mechanical ventilation: the TracMan randomized trial. JAMA. 2013;309:2121–2129.
31. Futier E, Constantin JM, Paugam-Burtz C, et al. A trial of intraoperative low-tidal-volume ventilation in abdominal surgery. N Engl J Med. 2013;369:428–437.
32. Cavalcanti AB, Suzumura EA, Laranjeira LN, et al. Effect of lung recruitment and titrated positive end-expiratory pressure (PEEP) vs low PEEP on mortality in patients with acute respiratory distress syndrome: a randomized clinical trial. JAMA. 2017;318:1335–1345.
33. Alhazzani W, Alshahrani M, Jaeschke R, et al. Neuromuscular blocking agents in acute respiratory distress syndrome: a systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. Crit Care. 2013;17:1–10.
34. Moss M, Huang DT, Brower RG, et al. Early neuromuscular blockade in the acute respiratory distress syndrome. N Engl J Med. 2019;380:1997–2008.
35. Guerin C, Reignier J, Richard JC, et al. Prone positioning in severe acute respiratory distress syndrome. N Engl J Med. 2013;368:2159-2168.
36. Hern?ndez G, Vaquero C, Gonz?lez P, et al. Effect of postextubation high-flow nasal cannula vs conventional oxygen therapy on reintubation in low-risk patients: a randomized clinical trial. JAMA. 2016;315:1354–1361.
37. Hernandez G, Vaquero C, Colinas L, et al. Effect of postextubation high-flow nasal cannula vs noninvasive ventilation on reintubation and postextubation respiratory failure in high-risk patients: a randomized clinical trial. JAMA. 2016;316:1565–1574.
38. Pham T, Brochard LJ, Slutsky AS. Mechanical ventilation: state of the art. Mayo Clin Proc. 2017;92:1382–1400.
39. Goligher EC, Ferguson ND, Brochard LJ. Clinical challenges in mechanical ventilation. Lancet. 2016;387:1856–1866.
40. Narendra DK, Hess DR, Sessler CN, et al. Update in management of severe hypoxemic respiratory failure. Chest. 2017;152:867–879.
41. Joshi N, Estes MK, Shipley K, et al. Noninvasive ventilation for patients in acute respiratory distress: an update. Emerg Med Pract. 2017;19:1–20.
42. Wedzicha JA, Miravitlles M, Hurst JR, et al. Management of COPD exacerbations: a European Respiratory Society/American Thoracic Society Guideline. Eur Respir J. 2017;49:1–16.
43. Mekontso Dessap A, Boissier F, Charron C, et al. Acute cor pulmonale during protective ventilation for acute respiratory distress syndrome: prevalence, predictors, and clinical impact. Intensive Care Med. 2016;42:862–870.
44. Nieman GF, Satalin J, Kollisch-Singule M, et al. Physiology in medicine: understanding dynamic alveolar physiology to minimize ventilator-induced lung injury. J Appl Physiol. 2017;122:1516–1522.
45. Fan E, Del Sorbo L, Goligher EC, et al. An official American Thoracic Society/European Society of Intensive Care Medicine/Society of Critical Care Medicine Clinical Practice Guideline: mechanical ventilation in adult patients with acute respiratory distress syndrome. Am J Respir Crit Care Med. 2017;195:1253–1263.
46. Brochard L, Slutsky A, Pesenti A. Mechanical ventilation to minimize progression of lung injury in acute respiratory failure. Am J Respir Crit Care Med. 2017;195:438–442.
47. Goligher EC, Dres M, Fan E, et al. Mechanical ventilation-induced diaphragm atrophy strongly impacts clinical outcomes. Am J Respir Crit Care Med. 2018;197:204–213.
48. Amato MB, Meade MO, Slutsky AS, et al. Driving pressure and survival in the acute respiratory distress syndrome. N Engl J Med. 2015;372:747–755.
49. Schmidt GA, Girard TD, Kress JP, et al. Official executive summary of an American Thoracic Society/American College of Chest Physicians Clinical Practice Guideline: liberation from mechanical ventilation in critically ill adults. Am J Respir Crit Care Med. 2017;195:115–119.
50. Beduneau G, Pham T, Schortgen F, et al. Epidemiology of weaning outcome according to a new definition. The WIND study. Am J Respir Crit Care Med. 2017;195:772–783.
51. Dupuis S, Brindamour D, Karzon S, et al. A systematic review of interventions to facilitate extubation in patients difficult-to-wean due to delirium, agitation, or anxiety and a meta-analysis of the effect of dexmedetomidine. Can J Anaesth. 2019;66:318–327.
52. Jubran A, Grant BJ, Duffner LA, et al. Long-term outcome after prolonged mechanical ventilation: a long-term acute-care hospital study. Am J Respir Crit Care Med. 2019. [Epub ahead of print.]
53. Brass P, Hellmich M, Kolodziej L, et al. Ultrasound guidance versus anatomical landmarks for subclavian or femoral vein catheterization. Cochrane Database Syst Rev. 2015;1:CD011447.
54. Brass P, Hellmich M, Kolodziej L, et al. Ultrasound guidance versus anatomical landmarks for internal jugular vein catheterization. Cochrane Database Syst Rev. 2015;1:CD006962.
55. Rochwerg B, Alhazzani W, Sindi A, et al. Fluid resuscitation in sepsis: a systematic review and network meta-analysis. Ann Intern Med. 2014;161:347–355.
56. Semler MW, Self WH, Wanderer JP, et al. Balanced crystalloids versus saline in critically ill adults. N Engl J Med. 2018;378:829–839.
57. Holcomb JB, Tilley BC, Baraniuk S, et al. Transfusion of plasma, platelets, and red blood cells in a 1:1:1 vs a 1:1:2 ratio and mortality in patients with severe trauma: the PROPPR randomized clinical trial. JAMA. 2015;313:471–482.
58. Holst LB, Haase N, Wetterslev J, et al. Lower versus higher hemoglobin threshold for transfusion in septic shock. N Engl J Med. 2014;371:1381–1391.
59. Gordon AC, Mason AJ, Thirunavukkarasu N, et al. Effect of early vasopressin vs norepinephrine on kidney failure in patients with septic shock: the VANISH randomized clinical trial. JAMA. 2016;316:509–518.
60. Hajjar LA, Vincent JL, Barbosa Gomes Galas FR, et al. Vasopressin versus norepinephrine in patients with vasoplegic shock after cardiac surgery: the VANCS randomized controlled trial. Anesthesiology. 2017;126:85–93.
61. Rowan KM, Angus DC, Bailey M, et al. Early, goal-directed therapy for septic shock—a patient-level meta-analysis. N Engl J Med. 2017;376:2223–2234.
62. Spaite DW, Hu C, Bobrow BJ, et al. The effect of combined out-of-hospital hypotension and hypoxia on mortality in major traumatic brain injury. Ann Emerg Med. 2017;69:62–72.
63. Benjamin EJ, Blaha MJ, Chiuve SE, et al. Heart disease and stroke statistics-2017 update: a report from the American Heart Association. Circulation. 2017;135:e146–e603.
64. Khera AV, Emdin CA, Drake I, et al. Genetic risk, adherence to a healthy lifestyle, and coronary disease. N Engl J Med. 2016;375:2349–2358.
65. Adefurin A, Ghimire LV, Kohli U, et al. Genetic variation in the alpha1B-adrenergic receptor and vascular response. Pharmacogenomics J. 2017;17:366–371.
66. Singer M, Deutschman CS, Seymour CW, et al. The third international consensus definitions for sepsis and septic shock (sepsis-3). JAMA. 2016;315:801–810.
67. Arshed S, Pinsky MR. Applied physiology of fluid resuscitation in critical illness. Crit Care Clin. 2018;34:267–277.
68. Messina A, Longhini F, Coppo C, et al. Use of the fluid challenge in critically ill adult patients: a systematic review. Anesth Analg. 2017;125:1532–1543.
69. Perner A, Cecconi M, Cronhjort M, et al. Expert statement for the management of hypovolemia in sepsis. Intensive Care Med. 2018;44:791–798.
70. Cannon JW. Hemorrhagic shock. N Engl J Med. 2018;378:370–379.
71. Wise R, Faurie M, Malbrain M, et al. Strategies for intravenous fluid resuscitation in trauma patients. World J Surg. 2017;41:1170–1183.
72. Moller MH, Claudius C, Junttila E, et al. Scandinavian SSAI clinical practice guideline on choice of first-line vasopressor for patients with acute circulatory failure. Acta Anaesthesiol Scand. 2016;60:1347–1366.
73. Khanna A, English SW, Wang XS, et al. Angiotensin II for the treatment of vasodilatory shock. N Engl J Med. 2017;377:419–430.
74. Sionis A, Rivas-Lasarte M, Mebazaa A, et al. Current use and impact on 30-day mortality of pulmonary artery catheter in cardiogenic shock patients: results from the CardShock Study. J Intensive Care Med. 2019. [Epub ahead of print.]
75. Bentzer P, Griesdale DE, Boyd J, et al. Will this hemodynamically unstable patient respond to a bolus of intravenous fluids? JAMA. 2016;316:1298–1309.
76. Schumann J, Henrich EC, Strobl H, et al. Inotropic agents and vasodilator strategies for the treatment of cardiogenic shock or low cardiac output syndrome. Cochrane Database Syst Rev. 2018;1:CD009669.
77. Rui Q, Jiang Y, Chen M, et al. Dopamine versus norepinephrine in the treatment of cardiogenic shock: a PRISMA-compliant meta-analysis. Medicine (Baltimore). 2017;96:1–8.
78. Unverzagt S, Buerke M, de Waha A, et al. Intra-aortic balloon pump counterpulsation (IABP) for myocardial infarction complicated by cardiogenic shock. Cochrane Database Syst Rev. 2015;3:CD007398.
79. Thiele H, Zeymer U, Thelemann N, et al. Intraaortic balloon pump in cardiogenic shock complicating acute myocardial infarction: long-term 6-year outcome of the randomized IABP-SHOCK II trial. Circulation. 2019;139:395–403.
80. Jeger RV, Urban P, Harkness SM, et al. Early revascularization is beneficial across all ages and a wide spectrum of cardiogenic shock severity: a pooled analysis of trials. Acute Card Care. 2011;13:14–20.
81. Thiele H, Akin I, Sandri M, et al. One-year outcomes after PCI strategies in cardiogenic shock. N Engl J Med. 2018;379:1699–1710.
82. Ouweneel DM, Eriksen E, Sjauw KD, et al. Percutaneous mechanical circulatory support versus intra-aortic balloon pump in cardiogenic shock after acute myocardial infarction. J Am Coll Cardiol. 2017;69:278–287.
83. Mehra MR, Naka Y, Uriel N, et al. A fully magnetically levitated circulatory pump for advanced heart failure. N Engl J Med. 2017;376:440–450.
84. Kalavrouziotis D, Rodes-Cabau J, Mohammadi S. Moving beyond SHOCK: new paradigms in the management of acute myocardial infarction complicated by cardiogenic shock. Can J Cardiol. 2017;33:36–43.
85. Furer A, Wessler J, Burkhoff D. Hemodynamics of cardiogenic shock. Interv Cardiol Clin. 2017;6:359–371.
86. Harjola VP, Mullens W, Banaszewski M, et al. Organ dysfunction, injury and failure in acute heart failure: from pathophysiology to diagnosis and management. A review on behalf of the acute heart failure committee of the heart failure association (HFA) of the European Society of Cardiology (ESC). Eur J Heart Fail. 2017;19:821–836.
87. van Diepen S, Katz JN, Albert NM, et al. Contemporary management of cardiogenic shock: a scientific statement from the American Heart Association. Circulation. 2017;136:e232–e268.
88. Mebazaa A, Combes A, van Diepen S, et al. Management of cardiogenic shock complicating myocardial infarction. Intensive Care Med. 2018;44:760–773.
89. Chakravarthy M, Tsukashita M, Murali S. A targeted management approach to cardiogenic shock. Crit Care Clin. 2018;34:423–437.
90. Moller MH, Claudius C, Junttila E, et al. Scandinavian SSAI clinical practice guideline on choice of first-line vasopressor for patients with acute circulatory failure. Acta Anaesthesiol Scand. 2016;60:1347–1366.
91. Bonello L, Delmas C, Schurtz G, et al. Mechanical circulatory support in patients with cardiogenic shock in intensive care units: a position paper of the “unite de soins intensifs de Cardiologie” group of the French Society of Cardiology, endorsed by the “groupe atherome et cardiologie Interventionnelle” of the French Society of Cardiology. Arch Cardiovasc Dis. 2018;111:601–612.
92. den Uil CA, Akin S, Jewbali LS, et al. Short-term mechanical circulatory support as a bridge to durable left ventricular assist device implantation in refractory cardiogenic shock: a systematic review and meta-analysis. Eur J Cardiothorac Surg. 2017;52:14–25.
93. Miller LW, Rogers JG. Evolution of left ventricular assist device therapy for advanced heart failure: a review. JAMA Cardiol. 2018;3:650–658.
94. Khorsandi M, Dougherty S, Bouamra O, et al. Extra-corporeal membrane oxygenation for refractory cardiogenic shock after adult cardiac surgery: a systematic review and meta-analysis. J Cardiothorac Surg. 2017;12:1–13.
95. Mahmoud AN, Elgendy IY, Mojadidi MK, et al. Prevalence, causes, and predictors of 30-day readmissions following hospitalization with acute myocardial infarction complicated by cardiogenic shock: findings from the 2013–2014 national readmissions database. J Am Heart Assoc. 2018;7:1–13.
96. Shah M, Patel B, Tripathi B, et al. Hospital mortality and thirty day readmission among patients with non-acute myocardial infarction related cardiogenic shock. Int J Cardiol. 2018;270:60–67.
97. Andrews B, Semler MW, Muchemwa L, et al. Effect of an early resuscitation protocol on in-hospital mortality among adults with sepsis and hypotension: a randomized clinical trial. JAMA. 2017;318:1233–1240.
98. Peake SL, Delaney A, Bailey M, et al. Goal-directed resuscitation for patients with early septic shock. N Engl J Med. 2014;371:1496–1506.
99. Mouncey PR, Osborn TM, Power GS, et al. Trial of early, goal-directed resuscitation for septic shock. N Engl J Med. 2015;372:1301–1311.
100. Rowan KM, Angus DC, Bailey M, et al. Early, goal-directed therapy for septic shock—a patient-level meta-analysis. N Engl J Med. 2017;376:2223–2234.
101. Asfar P, Meziani F, Hamel JF, et al. High versus low blood-pressure target in patients with septic shock. N Engl J Med. 2014;370:1583–1593.
102. Semler MW, Self WH, Wanderer JP, et al. Balanced crystalloids versus saline in critically ill adults. N Engl J Med. 2018;378:829–839.
103. Caironi P, Tognoni G, Masson S, et al. Albumin replacement in patients with severe sepsis or septic shock. N Engl J Med. 2014;370:1412–1421.
104. Gordon AC, Mason AJ, Thirunavukkarasu N, et al. Effect of early vasopressin vs norepinephrine on kidney failure in patients with septic shock: the VANISH randomized clinical trial. JAMA. 2016;316:509–518.
105. Khanna A, English SW, Wang XS, et al. Angiotensin II for the treatment of vasodilatory shock. N Engl J Med. 2017;377:419–430.
106. Gordon AC, Perkins GD, Singer M, et al. Levosimendan for the prevention of acute organ dysfunction in sepsis. N Engl J Med. 2016;375:1638–1648.
107. Holst LB, Haase N, Wetterslev J, et al. Lower versus higher hemoglobin threshold for transfusion in septic shock. N Engl J Med. 2014;371:1381–1391.
108. Cooper DJ, McQuilten ZK, Nichol A, et al. Age of red cells for transfusion and outcomes in critically ill adults. N Engl J Med. 2017;377:1858–1867.
109. Shiber S, Yahav D, Avni T, et al. Beta-lactam/beta-lactamase inhibitors versus carbapenems for the treatment of sepsis: systematic review and meta-analysis of randomized controlled trials. J Antimicrob Chemother. 2015;70:41–47.
110. de Jong E, van Oers JA, Beishuizen A, et al. Efficacy and safety of procalcitonin guidance in reducing the duration of antibiotic treatment in critically ill patients: a randomised, controlled, open-label trial. Lancet Infect Dis. 2016;16:819–827.
111. Vardakas KZ, Voulgaris GL, Maliaros A, et al. Prolonged versus short-term intravenous infusion of antipseudomonal beta-lactams for patients with sepsis: a systematic review and meta-analysis of randomised trials. Lancet Infect Dis. 2018;18:108–120.
112. Keh D, Trips E, Marx G, et al. Effect of hydrocortisone on development of shock among patients with severe sepsis: the HYPRESS randomized clinical trial. JAMA. 2016;316:1775–1785.
113. Annane D, Renault A, Brun-Buisson C, et al. Hydrocortisone plus fludrocortisone for adults with septic shock. N Engl J Med. 2018;378:809–818.
114. Venkatesh B, Finfer S, Cohen J, et al. Adjunctive glucocorticoid therapy in patients with septic shock. N Engl J Med. 2018;378:797–808.
115. Gaudry S, Hajage D, Schortgen F, et al. Initiation strategies for renal-replacement therapy in the intensive care unit. N Engl J Med. 2016;375:122–133.
116. Barbar SD, Clere-Jehl R, Bourredjem A, et al. Timing of renal-replacement therapy in patients with acute kidney injury and sepsis. N Engl J Med. 2018;379:1431–1442.
117. Zarbock A, Kellum JA, Schmidt C, et al. Effect of early vs delayed initiation of renal replacement therapy on mortality in critically ill patients with acute kidney injury: the ELAIN randomized clinical trial. JAMA. 2016;315:2190–2199.
118. Harvey SE, Parrott F, Harrison DA, et al. Trial of the route of early nutritional support in critically ill adults. N Engl J Med. 2014;371:1673–1684.
119. Schmidt K, Worrack S, Von Korff M, et al. Effect of a primary care management intervention on mental health-related quality of life among survivors of sepsis: a randomized clinical trial. JAMA. 2016;315:2703–2711.
120. Napolitano LM. Sepsis 2018: definitions and guideline changes. Surg Infect (Larchmt). 2018;19:117–125.
121. Rhee C, Dantes R, Epstein L, et al. Incidence and trends of sepsis in US hospitals using clinical vs claims data, 2009–2014. JAMA. 2017;318:1241–1249.
122. Kaukonen KM, Bailey M, Pilcher D, et al. Systemic inflammatory response syndrome criteria in defining severe sepsis. N Engl J Med. 2015;372:1629–1638.
123. Cecconi M, Evans L, Levy M, et al. Sepsis and septic shock. Lancet. 2018;46:29–36.
124. Rhodes A, Evans LE, Alhazzani W, et al. Surviving Sepsis Campaign: international guidelines for management of sepsis and septic shock: 2016. Crit Care Med. 2017;45:486–552.
125. De Backer D, Cecconi M, Lipman J, et al. Challenges in the management of septic shock: a narrative review. Intensive Care Med. 2019;45:420–433.
126. Thompson K, Venkatesh B, Finfer S. Sepsis and septic shock: current approaches to management. Intern Med J. 2019;49:160–170.
127. Viale P, Tedeschi S, Scudeller L, et al. Infectious diseases team for the early management of severe sepsis and septic shock in the emergency department. Clin Infect Dis. 2017;65:1253–1259.
128. Liu VX, Fielding-Singh V, Greene JD, et al. The timing of early antibiotics and hospital mortality in sepsis. Am J Respir Crit Care Med. 2017;196:856–863.
129. Prescott HC, Angus DC. Enhancing recovery from sepsis: a review. JAMA. 2018;319:62–75.
130. Seymour CW, Gesten F, Prescott HC, et al. Time to treatment and mortality during mandated emergency care for sepsis. N Engl J Med. 2017;376:2235–2244.
131. Mayr FB, Talisa VB, Balakumar V, et al. Proportion and cost of unplanned 30-day readmissions after sepsis compared with other medical conditions. JAMA. 2017;317:530–531.
132. Arrich J, Holzer M, Havel C, et al. Hypothermia for neuroprotection in adults after cardiopulmonary resuscitation. Cochrane Database Syst Rev. 2016;2:CD004128.
133. Bhattacharjee S, Baidya DK, Maitra S. Therapeutic hypothermia after cardiac arrest is not associated with favorable neurological outcome: a meta-analysis. J Clin Anesth. 2016;33:225–232.
134. Andrews PJ, Sinclair HL, Rodriguez A, et al. Hypothermia for intracranial hypertension after traumatic brain injury. N Engl J Med. 2015;373:2403–2412.
135. Cooper DJ, Nichol AD, Bailey M, et al. Effect of early sustained prophylactic hypothermia on neurologic outcomes among patients with severe traumatic brain injury: the POLAR randomized clinical trial. JAMA. 2018;320:2211–2220.
136. Neugebauer H, Schneider H, B?sel J, et al. Outcomes of hypothermia in addition to decompressive hemicraniectomy in treatment of malignant middle cerebral artery stroke: a randomized clinical trial. JAMA Neurol. 2019;76:571–579.
137. Legriel S, Lemiale V, Schenck M, et al. Hypothermia for neuroprotection in convulsive status epilepticus. N Engl J Med. 2016;375:2457–2467.
138. Gasparrini A, Guo Y, Hashizume M, et al. Mortality risk attributable to high and low ambient temperature: a multicountry observational study. Lancet. 2015;386:369–375.
139. Sherbakov T, Malig B, Guirguis K, et al. Ambient temperature and added heat wave effects on hospitalizations in California from 1999 to 2009. Environ Res. 2018;160:83–90.
140. Hosokawa Y, Casa DJ, Rosenberg H, et al. Round table on malignant hyperthermia in physically active populations: meeting proceedings. J Athl Train. 2017;52:377–383.
141. Racinais S, Alonso JM, Coutts AJ, et al. Consensus recommendations on training and competing in the heat. Scand J Med Sci Sports. 2015;25(suppl 1):s6–s19.
142. Mok G, DeGroot D, Hathaway NE, et al. Exertional heat injury: effects of adding cold (4°C) intravenous saline to prehospital protocol. Curr Sports Med Rep. 2017;16:103–108.
143. Yokobori S, Koido Y, Shishido H, et al. Feasibility and safety of intravascular temperature manage-ment for severe heat stroke: a prospective multicenter pilot study. Crit Care Med. 2018. [Epub ahead of print.]
144. Gaudio FG, Grissom CK. Cooling methods in heat stroke. J Emerg Med. 2016;50:607–616.
145. Szota AM, Araszkiewicz AS. The risk factors, frequency and diagnosis of atypical antipsychotic drug-induced hypothermia: practical advice for doctors. Int Clin Psychopharmacol. 2019;34:1–8.
146. Handford C, Thomas O, Imray CHE. Frostbite. Emerg Med Clin North Am. 2017;35:281–299.
147. Heil K, Thomas R, Robertson G, et al. Freezing and non-freezing cold weather injuries: a systematic review. Br Med Bull. 2016;117:79–93.
148. Svendsen OS, Grong K, Andersen KS, et al. Outcome after rewarming from accidental hypothermia by use of extracorporeal circulation. Ann Thorac Surg. 2017;103:920–925.
149. Saczkowski RS, Brown DJA, Abu-Laban RB, et al. Prediction and risk stratification of survival in accidental hypothermia requiring extracorporeal life support: an individual patient data meta-analysis. Resuscitation. 2018;127:51–57.
150. Nygaard RM, Lacey AM, Lemere A, et al. Time matters in severe frostbite: assessment of limb/digit salvage on the individual patient level. J Burn Care Res. 2017;38:53–59.
151. Chan PS, Berg RA, Tang Y, et al. Association between therapeutic hypothermia and survival after in-hospital cardiac arrest. JAMA. 2016;316:1375–1382.
152. Vijayakumar HN, Kannan S, Tejasvi C, et al. Study of effect of magnesium sulphate in management of acute organophosphorous pesticide poisoning. Anesth Essays Res. 2017;11:192–196.
153. Juurlink DN. Activated charcoal for acute overdose: a reappraisal. Br J Clin Pharmacol. 2016;81:482–487.
154. Maduwage K, Buckley NA, de Silva HJ, et al. Snake antivenom for snake venom induced consumption coagulopathy. Cochrane Database Syst Rev. 2015;6:CD011428.
155. Chiew AL, Gluud C, Brok J, et al. Interventions for paracetamol (acetaminophen) overdose. Cochrane Database Syst Rev. 2018;2:CD003328.
156. Hempstead K, Phillips J. Divergence in recent trends in deaths from intentional and unintentional poisoning. Health Aff (Millwood). 2019;38:29–35.
157. Mowry JB, Spyker DA, Brooks DE, et al. 2015 annual report of the American Association of Poison Control Centers’ National Poison Data System (NPDS): 33rd annual report. Clin Toxicol (Phila). 2016;54:924–1109.
158. Eddleston M. Novel clinical toxicology and pharmacology of organophosphorus insecticide self-poisoning. Annu Rev Pharmacol Toxicol. 2019;59:341–360.
159. Mosedale M, Watkins PB. Drug-induced liver injury: advances in mechanistic understanding that will inform risk management. Clin Pharmacol Ther. 2017;101:469–480.
160. White J, Weinstein SA, De Haro L, et al. Mushroom poisoning: a proposed new clinical classification. Toxicon. 2019;157:53–65.
161. Levine M, Hoffman RS, Lavergne V, et al. Systematic review of the effect of intravenous lipid emulsion therapy for non-local anesthetics toxicity. Clin Toxicol. 2016;54:194–221.
162. St-Onge M, Anseeuw K, Cantrell FL, et al. Experts consensus recommendations for the management of calcium channel blocker poisoning in adults. Crit Care Med. 2017;45:e306–e315.
163. Kraut JA, Mullins ME. Toxic alcohols. N Engl J Med. 2018;378:270–280.
164. Kim HK, Nelson LS. Reducing the harm of opioid overdose with the safe use of naloxone: a pharmacologic review. Expert Opin Drug Saf. 2015;14:1137–1146.
165. Graudins A, Lee HM. Druda D. Calcium channel antagonist and beta-blocker overdose: antidotes and adjunct therapies. Br J Clin Pharmacol. 2016;81:453–461.
166. ACMT Position Statement. Duration of intravenous acetylcysteine therapy following acetaminophen overdose. J Med Toxicol. 2017;13:126–127.
167. Ghannoum M, Hoffman RS, Gosselin S, et al. Use of extracorporeal treatments in the management of poisonings. Kidney Int. 2018;94:682–688.
168. Sierink JC, Treskes K, Edwards MJ, et al. Immediate total-body CT scanning versus conventional imaging and selective CT scanning in patients with severe trauma (REACT-2): a randomised controlled trial. Lancet. 2016;388:673–683.
169. Chesnut RM, Temkin N, Carney N, et al. A trial of intracranial-pressure monitoring in traumatic brain injury. N Engl J Med. 2012;367:2471–2481.
170. Holcomb JB, Tilley BC, Baraniuk S, et al. Transfusion of plasma, platelets, and red blood cells in a 1:1:1 vs a 1:1:2 ratio and mortality in patients with severe trauma: the PROPPR randomized clinical trial. JAMA. 2015;313:471–482.
171. Ramos G, Cornistein W, Cerino GT, et al. Systemic antimicrobial prophylaxis in burn patients: systematic review. J Hosp Infect. 2017;97:105–114.
172. Jarman MP, Curriero FC, Haut ER, et al. Associations of distance to trauma care, community income, and neighborhood median age with rates of injury mortality. JAMA Surg. 2018;153:535–543.
173. Cancio LC, Sheridan RL, Dent R, et al. Guidelines for burn care under austere conditions: special etiologies: blast, radiation, and chemical injuries. J Burn Care Res. 2017;38:e482–e496.
174. Kuncir E, Spencer D, Feldman K, et al. 911 emergency medical services and re-triage to level I trauma centers. J Am Coll Surg. 2018;226:64–69.
175. Schoenfeld AJ, Tobert DG, Le HV, et al. The utility of adding magnetic resonance imaging to computed tomography alone in the evaluation of cervical spine injury: a propensity matched analysis. Spine. 2018;43:179–184.
176. Dziadzko V, Dziadzko MA, Johnson MM, et al. Acute psychological trauma in the critically ill: patient and family perspectives. Gen Hosp Psychiatry. 2017;47:68–74.
177. Hajibandeh S, Hajibandeh S, Idehen N. Meta-analysis of the effect of tertiary survey on missed injury rate in trauma patients. Injury. 2015;46:2474–2482.
178. Greenhalgh DG. Management of burns. N Engl J Med. 2019;380:2349–2359.
179. von Keudell AG, Weaver MJ, Appleton PT, et al. Diagnosis and treatment of acute extremity compartment syndrome. Lancet. 2015;386:1299–1310.
180. Sheridan RL, Friedstat J, Votta K. Lessons learned from burn disasters in the post-9/11 era. Clin Plast Surg. 2017;44:435–440.
181. Sheridan RL. Fire-related inhalation injury. N Engl J Med. 2016;375:464–469.
182. Waldmann V, Narayanan K, Combes N, et al. Electrical cardiac injuries: current concepts and management. Eur Heart J. 2018;39:1459–1465.
183. Sachett JAG, da Silva IM, Alves EC, et al. Poor efficacy of preemptive amoxicillin clavulanate for preventing secondary infection from Bothrops snakebites in the Brazilian Amazon: a randomized controlled clinical trial. PLoS Negl Trop Dis. 2017;11:1–21.
184. Gerardo CJ, Quackenbush E, Lewis B, et al. The efficacy of Crotalidae polyvalent immune Fab (ovine) antivenom versus placebo plus optional rescue therapy on recovery from copperhead snake envenomation: a randomized, double-blind, placebo-controlled, clinical trial. Ann Emerg Med. 2017;70:233–244.
185. Bush SP, Ruha AM, Seifert SA, et al. Comparison of F(ab?)2 versus fab antivenom for pit viper envenomation: a prospective, blinded, multicenter, randomized clinical trial. Clin Toxicol (Phila). 2015;53:37–45.
186. Isbister GK, Jayamanne S, Mohamed F, et al. A randomized controlled trial of fresh frozen plasma for coagulopathy in Russell’s viper (Daboia russelii) envenoming. J Thromb Haemost. 2017;15:645–654.
187. Dart RC, Bogdan G, Heard K, et al. A randomized, double-blind, placebo-controlled trial of a highly purified equine F(ab)2 antibody black widow spider antivenom. Ann Emerg Med. 2013;61:458–467.
188. Isbister GK, Page CB, Buckley NA, et al. Randomized controlled trial of intravenous antivenom versus placebo for latrodectism: the second Redback Antivenom Evaluation (RAVE-II) study. Ann Emerg Med. 2014;64:620–628.
189. El-Asheer OM, Hammad EEM, Mohamad IL, et al. A randomized comparative study between intravenous and intramuscular scorpion antivenom regimens in children. Toxicon. 2019;159:45–49.
190. Rodrigo C. Gnanathasan A. Management of scorpion envenoming: a systematic review and metaanalysis of controlled clinical trials. Syst Rev. 2017;6:1–12.
191. Romani L, Whitfeld MJ, Koroivueta J, et al. Mass drug administration for scabies control in a population with endemic disease. N Engl J Med. 2015;373:2305–2313.
192. Pariser DM, Meinking TL, Bell M, et al. Topical 0.5% ivermectin lotion for treatment of head lice. N Engl J Med. 2012;367:1687–1693.
193. Semmler M, Abdel-Ghaffar F, Gestmann F, et al. Randomized, investigator-blinded, controlled clinical study with lice shampoo (Licener®) versus dimethicone ( Jacutin® Pedicul Fluid) for the treatment of infestations with head lice. Parasitol Res. 2017;116:1863–1870.
194. Avau B, Borra V, Vandekerckhove P, et al. The treatment of snake bites in a first aid setting: a systematic review. PLoS Negl Trop Dis. 2016;10:1–20.
195. Slagboom J, Kool J, Harrison RA, et al. Haemotoxic snake venoms: their functional activity, impact on snakebite victims and pharmaceutical promise. Br J Haematol. 2017;177:947–959.
196. Mong R, Ng VCH, Tse ML. Safety profile of snake antivenom (use) in Hong Kong—a review of 191 cases from 2008 to 2015. Clin Toxicol (Phila). 2017;55:1066–1071.
197. Guti?rrez JM, Calvete JJ, Habib AG, et al. Snakebite envenoming. Nat Rev Dis Primers. 2017;3:1–21.
198. Longbottom J, Shearer FM, Devine M, et al. Vulnerability to snakebite envenoming: a global mapping of hotspots. Lancet. 2018;392:673–684.
199. Corbett B, Clark RF. North American snake envenomation. Emerg Med Clin North Am. 2017;35:339–354.
200. Gerardo CJ, Vissoci JR, Brown MW, et al. Coagulation parameters in copperhead compared to other Crotalinae envenomation: secondary analysis of the F(ab?)2 versus Fab antivenom trial. Clin Toxicol (Phila). 2017;55:109–114.
201. World Health Organization. Guidelines for the Prevention and Clinical Management of Snakebite in Africa. Brazzaville: WHO (Regional Office for Africa); 2010. http://apps.who.int/medicinedocs/documents/s17810en/s17810en.pdf. Accessed February 11, 2019.
202. White J. CSL Biotherapies Pty. Ltd. A clinician’s guide to Australian venomous bites and stings. Parkville VIC 3052, Australia. CSL Ltd, 2013. http://www.toxinology.com/fusebox.cfm?staticaction=generic_static_files/cgavbs_avh.html. February 11, 2019.
203. Stoecker WV, Vetter RS, Dyer JA. NOT RECLUSE-a mnemonic device to avoid false diagnoses of brown recluse spider bites. JAMA Dermatol. 2017;153:377–378.
204. Erickson TB, Cheema N. Arthropod envenomation in North America. Emerg Med Clin North Am. 2017;35:355–375.
205. O’Connor AD, Padilla-Jones A, Ruha AM. Severe bark scorpion envenomation in adults. Clin Toxicol (Phila). 2018;56:170–174.
206. Karimkhani C, Colombara DV, Drucker AM, et al. The global burden of scabies: a cross-sectional analysis from the Global Burden of Disease Study 2015. Lancet Infect Dis. 2017;17:1247–1254.
207. Abramowicz M, Zuccotti G. Drugs for head lice. JAMA - 2017;317(19):2010-2011.
208. Ibrahim O, Syed UM, Tomecki KJ. Bedbugs: helping your patient through an infestation. Cleve Clin J Med. 2017;84:207–211.
209. Hornbeak KB, Auerbach PS. Marine envenomation. Emerg Med Clin North Am. 2017;35:321–337.
210. Friedman MA, Fernandez M, Backer LC, et al. An updated review of Ciguatera Fish Poisoning: clinical, epidemiological, environmental, and public health management. Mar Drugs. 2017;15:1–41.
211. Mullins ME, Hoffman RS. Is mannitol the treatment of choice for patients with ciguatera fish poisoning? Clin Toxicol (Phila). 2017;55:947–955.
212. Update: exertional rhabdomyolysis, active component, U.S. Armed Forces, 2013–2017. MSMR. 2018;25:13–17.
213. Hilton-Jones D. Statin-related myopathies. Pract Neurol. 2018;18:97–105.
214. Nazir S, Lohani S, Tachamo N, et al. Statin-associated autoimmune myopathy: a systematic review of 100 cases. J Clin Rheumatol. 2017;23:149–154.
215. Kashiura M, Sugiyama K, Hamabe Y. Association between rapid serum sodium correction and rhabdomyolysis in water intoxication: a retrospective cohort study. J Intensive Care. 2017;5:1–6.
216. Rawson ES, Clarkson PM, Tarnopolsky MA. Perspectives on exertional rhabdomyolysis. Sports Med. 2017;47:33–49.
217. Huynh A, Leong K, Jones N, et al. Outcomes of exertional rhabdomyolysis following high-intensity resistance training. Intern Med J. 2016;46:602–608.
218. Nelson DA, Deuster PA, Carter R 3rd, et al. Sickle cell trait, rhabdomyolysis, and mortality among U.S. Army soldiers. N Engl J Med. 2016;375:435–442.
219. Witting N, Laforet P, Voermans NC, et al. Phenotype and genotype of muscle ryanodine receptor rhabdomyolysis-myalgia syndrome. Acta Neurol Scand. 2018;137:452–461.
220. Kraeva N, Sapa A, Dowling JJ, et al. Malignant hyperthermia susceptibility in patients with exertional rhabdomyolysis: a retrospective cohort study and updated systematic review. Can J Anaesth. 2017;64:736–743.
221. Safari S, Yousefifard M, Hashemi B, et al. The value of serum creatine kinase in predicting the risk of rhabdomyolysis-induced acute kidney injury: a systematic review and meta-analysis. Clin Exp Nephrol. 2016;20:153–161.
222. Michelsen J, Cordtz J, Liboriussen L, et al. Prevention of rhabdomyolysis-induced acute kidney injury — a DASAIM/DSIT clinical practice guideline. Acta Anaesthesiol Scand. 2019. [Epub ahead of print.]
223. Long B, Koyfman A, Gottlieb M. An evidence-based narrative review of the emergency department evaluation and management of rhabdomyolysis. Am J Emerg Med. 2019. [Epub ahead of print.]
224. Baeza-Trinidad R, Brea-Hernando A, Morera-Rodriguez S, et al. Creatinine as predictor value of mortality and acute kidney injury in rhabdomyolysis. Intern Med J. 2015;45:1173–1178.
225. Cavalcanti AB, Bozza FA, Machado FR, et al. Effect of a quality improvement intervention with daily round checklists, goal setting, and clinician prompting on mortality of critically ill patients: a randomized clinical trial. JAMA. 2016;315:1480–1490.
226. Semler MW, Self WH, Wanderer JP, et al. Balanced crystalloids versus saline in critically ill adults. N Engl J Med. 2018;378:829-839.
227. Gaudry S, Hajage D, Schortgen F, et al. Initiation strategies for renal-replacement therapy in the intensive care unit. N Engl J Med. 2016;375:122–133.
228. Yang XM, Tu GW, Zheng JL, et al. A comparison of early versus late initiation of renal replacement therapy for acute kidney injury in critically ill patients: an updated systematic review and metaanalysis of randomized controlled trials. BMC Nephrol. 2017;18:1–14.
229. Young P, Saxena M, Bellomo R, et al. Acetaminophen for fever in critically ill patients with suspected infection. N Engl J Med. 2015;373:2215–2224.
230. Chu DK, Kim LH, Young PJ, et al. Mortality and morbidity in acutely ill adults treated with liberal versus conservative oxygen therapy (IOTA): a systematic review and meta-analysis. Lancet. 2018;391:1693–1705.
231. Asfar P, Schortgen F, Boisrame-Helms J, et al. Hyperoxia and hypertonic saline in patients with septic shock (HYPERS2S): a two-by-two factorial, multicentre, randomised, clinical trial. Lancet Respir Med. 2017;5:180–190.
232. Parienti JJ, Mongardon N, Megarbane B, et al. Intravascular complications of central venous catheterization by insertion site. N Engl J Med. 2015;373:1220–1229.
233. Guidet B, Leblanc G, Simon T, et al. Effect of systematic intensive care unit triage on long-term mortality among critically ill elderly patients in France: a randomized clinical trial. JAMA. 2017;318:1450–1459.
234. Holst LB, Haase N, Wetterslev J, et al. Lower versus higher hemoglobin threshold for transfusion in septic shock. N Engl J Med. 2014;371:1381–1391.
235. Krag M, Marker S, Perner A, et al. Pantoprazole in patients at risk for gastrointestinal bleeding in the ICU. N Engl J Med. 2018;379:2199-2208.
236. Skrobik Y, Duprey MS, Hill NS, et al. Low-dose nocturnal dexmedetomidine prevents ICU delirium. A randomized, placebo-controlled trial. Am J Respir Crit Care Med. 2018;197:1147–1156.
237. Connolly B, O’Neill B, Salisbury L, et al. Physical rehabilitation interventions for adult patients during critical illness: an overview of systematic reviews. Thorax. 2016;71:881–890.
238. Schaller SJ, Anstey M, Blobner M, et al. Early, goal-directed mobilisation in the surgical intensive care unit: a randomised controlled trial. Lancet. 2016;388:1377–1388.
239. Connolly B, Salisbury L, O’Neill B, et al. Exercise rehabilitation following intensive care unit discharge for recovery from critical illness. Cochrane Database Syst Rev. 2015;CD008632.
240. White DB, Angus DC, Shields AM, et al. A randomized trial of a family-support intervention in intensive care units. N Engl J Med. 2018;378:2365–2375.
241. Martyn JAJ, Mao J, Bittner EA. Opioid tolerance in critical illness. N Engl J Med. 2019;380:365–378.
242. Stelfox HT, Soo A, Niven DJ, et al. Assessment of the safety of discharging select patients directly home from the intensive care unit: a multicenter population-based cohort study. JAMA Intern Med. 2018;178:1390–1399.
243. Kramer CL. Intensive care unit-acquired weakness. Neurol Clin. 2017;35:723–736.
244. Azoulay E, Vincent JL, Angus DC, et al. Recovery after critical illness: putting the puzzle together—a consensus of 29. Crit Care. 2017;21:1–7.
245. Mukherjee V, Evans L. Implementation of the surviving sepsis campaign guidelines. Curr Opin Crit Care. 2017;23:412–416.
246. Bosslet GT, Pope TM, Rubenfeld GD, et al. An official ATS/AACN/ACCP/ESICM/SCCM policy statement: responding to requests for potentially inappropriate treatments in intensive care units. Am J Respir Crit Care Med. 2015;191:1318–1330.
247. Brown SM, Azoulay E, Benoit D, et al. The practice of respect in the ICU. Am J Respir Crit Care Med. 2018;197:1389-1395.
248. Swinton M, Giacomini M, Toledo F, et al. Experiences and expressions of spirituality at the end of life in the intensive care unit. Am J Respir Crit Care Med. 2017;195:198–204.
249. Theerawit P, Sutherasan Y, Ball L, et al. Respiratory monitoring in adult intensive care unit. Expert Rev Respir Med. 2017;11:453–468.
250. West JB, Wang DL, Prisk GK, et al. Noninvasive measurement of pulmonary gas exchange: comparison with data from arterial blood gases. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 2019;316:L114–L118.
251. Zeserson E, Goodgame B, Hess JD, et al. Correlation of venous blood gas and pulse oximetry with arterial blood gas in the undifferentiated critically ill patient. J Intensive Care Med. 2018;33:176–181.
252. Jubran A. Pulse oximetry. Crit Care. 2015;19:1–7.
253. Page B. Assessing O2 saturation: the how, what and why of pulse oximetry. JEMS. 2017;42:49-53.
254. Nassar BS, Schmidt GA. Capnography during critical illness. Chest. 2016;149:576–585.
255. Kreit JW. Volume capnography in the intensive care unit: physiological principles, measurements, and calculations. Ann Am Thorac Soc. 2019;16:291–300.
256. Schmidt GA, Girard TD, Kress JP, et al. Official executive summary of an American Thoracic Society/American College of Chest Physicians Clinical Practice Guidelines: liberation from mechanical ventilation in critically ill adults. Am J Respir Crit Care Med. 2017;195:115–119.

Труды отечественных авторов при подготовке статей по терапии для пользователей сайта - не использовались, так как их вы всегда можете найти в библиотеках.

- Вернуться в оглавление раздела "Терапия"

Редактор: Искандер Милевски. Дата обновления публикации: 15.12.2024