В статьях на сайте использованы следующие сокращения:

• °F — температура по Фаренгейту
• °C — температура по Цельсию
• 5-НТ — 5-гидроксииндолуксусная кислота мочи
• АБ — антибиотик(и)
• АБЛА — аллергический бронхолегочный аспергиллез
• АБТ — антибактериальная терапия
• АВ — атриовентрикулярный
• АГ — артериальная гипертензия
• АГн — антиген
• АД — артериальное давление
• АДГ — антидиуретический гормон
• АДС — анатоксин дифтерийно-столбнячный
• АДС-М — анатоксин дифтерийно-столбнячный (малые дозы)
• АДФ — аденозиндифосфорная кислота, аденозиндифосфат
• АКДС — анатоксин коклюшно-дифтерийно-столбнячный
• АКТГ — адренокортикотропный гормон
• АКШ — аортокоронарное шунтирование
• АЛТ — аланинаминотрансфераза
• амер. — американский
• АМК — азот мочевины крови
• АМФ — аденозинмонофосфорная кислота, аденозинмонофосфат
• АНА — антинуклеарные антитела
• анат. — анатомический
• англ. — английский
• АНЦА — антинейтрофильные цитоплазматические антитела
• АПФ — ангиотензин-превращающий фермент
• АРВТ — антиретровирусная терапия
• АРП — активность ренина в плазме крови
• АСК — аминосалициловая кислота
• ACT — аспартатаминотрансфераза
• АТл — антитело
• АТФ — аденозинтрифосфорная кислота, аденозинтрифосфат
• АуД — аутосомно-доминантный
• АуР — аутосомно-рецессивный
• АФП — α-фетопротеин
• АФС — антифосфолипидный синдром
• АХЭ — ацетилхолинэстераза
• АЦХ — ацетилхолин
• АЧТВ — активированное частичное тромбопластиновое время
• БА — бронхиальная астма
• БАД — биологически активная добавка
• БАЛ — бронхоальвеолярный лаваж
• БАР — биполярное аффективное расстройство (I или II типа)
• БКК — большой круг кровообращения
• БЛНПГ — блокада левой ножки пучка Гиса
• БМСЭ — бюро медико-социальной экспертизы
• БП — брюшная полость
• БПНПГ — блокада правой ножки пучка Гиса
• БРА — блокатор рецепторов ангиотензина
• БРМ — базовые реанимационные мероприятия
• БРНС — быстро разрешившееся необъяснимое событие
• БЦЖ — бацилла Кальметта-Герена
• в т.ч. — в том числе
• в. — век
• в/ — внутри... в сложносоставных словах (напр.
• в/сосудистый, в/черепной и т.п.)
• в/а — внутриартериально
• в/в — внутривенно
• в/к — внутрикожно
• в/м — внутримышечно
• вв. — века
• в-во — вещество
• ВВЭ — военно-врачебная экспертиза
• ВГД — внутриглазное давление
• ВГЧ — вирус герпеса человека
• ВДП — верхние дыхательные пути
• ВЖК — внутрижелудочковое кровоизлияние
• ВЗК — воспалительные заболевания кишечника
• ВЗОМТ — воспалительные заболевания органов малого таза
• ВИП — вазоактивный интестинальный пептид
• ВИЧ — вирус иммунодефицита человека
• ВМП — высокотехнологичная медицинская помощь
• ВМС — внутриматочное средство (спираль)
• ВН — вирусная нагрузка
• ВНС — вегетативная нервная система
• ВОВ — Великая Отечественная война
• ВОГМ — высокогорный отек головного мозга
• ВОЗ — Всемирная организация здравоохранения
• ВОЛ — высокогорный отек легких
• ВОМК — врач, осуществляющий медицинский контроль
• ВОП — врач общей практики
• ВПВ — верхняя полая вена
• ВПГ — вирус простого герпеса
• ВПР — врожденные пороки развития
• ВПС — врожденный порок сердца
• ВПЧ — вирус папилломы человека
• ВРТ — вспомогательные репродуктивные технологии
• ВСО — водно-солевой обмен
• ВЧД — внутричерепное давление
• ВЧИВЛ — высокочастотная искусственная вентиляция легких (HFV)
• ВЭБ — вирус Эпштейна-Барр
• г — грамм
• г. — год
• Г-6-ФД — глюкозо-6-фосфатдегидрогеназа
• ГАМК — гамма-аминомасляная кислота
• ГБ — гипертоническая болезнь
• ГБН — гемолитическая болезнь новорожденного
• ГБО — гипербарическая оксигенация
• ГГПТ — γ-глутамилтранспептидаза
• ГЗТ — гиперчувствительность замедленного типа
• гист. — гистологический
• ГК — грудная клетка
• ГКМП — гипертрофическая кардиомиопатия
• ГКС — глюкокортикостероид(ы)
• ГЛГ — гемофагоцитарный лимфогистиоцитоз
• ГЛПС — геморрагическая лихорадка с почечным синдромом
• ГМ — головной мозг
• ГМ-КСФ — гранулоцитарно-макрофагальный колониестимулирующий фактор
• ГМФ — гуанозинмонофосфат
• ГнРГ — гонадотропин-рилизинг-гормон
• ГНТ — гиперчувствительность немедленного типа
• ГПОД — грыжа пищеводного отверстия диафрагмы
• ГРДС — гипоксическая реакция дыхательной системы
• греч. — греческий
• ГТФ — гуанозинтрифосфат
• ГУС — гемолитико-уремический синдром
• Гц — герц
• ГЭБ — гематоэнцефалический барьер
• ГЭР — гастроэзофагеальный рефлюкс
• ГЭРБ — гастроэзофагеальная рефлюксная болезнь
• дБ — децибел
• ДВС — диссеминированное внутрисосудистое свертывание
• ДГПЖ — доброкачественная гиперплазия предстательной железы
• ДГТ — дигидротестостерон
• ДД — дифференциальная диагностика, дифференциально-диагностический
• ДДБА — длительно действующие β₂-агонисты
• ДДК — дифференциально-диагностический критерий (критерии)
• ДИ — доверительный интервал
• ДК — диагностический критерий
• ДКА — диабетический кетоацидоз
• ДКМП — дилатационная кардиомиопатия
• ДМЖП — дефект межжелудочковой перегородки
• ДМПП — дефект межпредсердной перегородки
• ДМС — добровольное медицинское страхование
• ДН — дыхательная недостаточность
• ДНК — дезоксирибонуклеиновая кислота
• ДНТ — дефекты нервной трубки
• ДОФА — дигидроксифенилаланин
• ДП — дыхательные пути
• ДПК — двенадцатиперстная кишка
• ДПМ — дата последней менструации
• ДПП — давление в правом предсердии
• др. — другие
• ДТП — дорожно-транспортное происшествие
• ДЦП — детский церебральный паралич
• ЕД — единица действия
• ЖВП — желчевыводящие пути
• ЖДА — железодефицитная анемия
• ЖЕЛ — жизненная емкость легких
• ЖКБ — желчекаменная болезнь
• ЖКК — желудочно-кишечное кровотечение
• ЖКТ — желудочно-кишечный тракт
• ЖНВЛП — жизненно необходимые и важные лекарственные препараты (список, перечень)
• ЖТ — желудочковая тахикардия
• ЗВУР — задержка внутриутробного развития
• ЗЛ — здоровые люди (лица)
• ЗНО — злокачественное новообразование
• ЗО — здравоохранение
• ЗОЖ — здоровый образ жизни
• ЗСН — застойная сердечная недостаточность
• иАПФ — ингибиторы ангиотензин-превращающего фермента
• ИБС — ишемическая болезнь сердца
• ИВЛ — искусственная вентиляция легких
• ИГКС — ингаляционные глюкокортикостероиды
• ИЗЛ — интерстициальные заболевания легких
• ИКД — имплантируемый кардиовертер-дефибриллятор
• ИКП — иммунокомпрометированные пациенты
• ИЛ — интерлейкин
• ИЛДБ — интегрированное лечение детских болезней
• ИМ — инфаркт миокарда
• ИМАО — ингибитор(ы) моноаминоксидазы
• ИМбпБТ — инфаркт миокарда без подъема сегмента ST
• ИМП — инфекция мочевых (мочевыводящих) путей
• ИМпST — инфаркт миокарда с подъемом сегмента ST
• ИМТ — индекс массы тела
• ИОЛ — интраокулярная линза
• ИПП — ингибиторы протонной помпы (протонного насоса)
• ИППП — инфекции, передаваемые половым путем
• ИСС — индивидуальные спасательные средства
• истор. — историческое
• итал. — итальянский
• ИТП — идиопатическая тромбоцитопеническая пурпура
• ИТШ — инфекционно-токсический шок
• ИФА — иммуноферментный анализ
• КА — коронарная(ые) артерия(и)
• КАГ — коронарография
• КБМП - качество и безопасность медицинской помощи
• кВ — киловольт
• кг — килограмм
• КДБА — короткодействующие β2-агонисты
• КДД — конечно-диастолическое давление
• КДО — конечно-диастолический объем
• КДР — конечно-диастолический размер
• кит. — китайский
• ккал — килокалория
• кл. — клетки, клеток
• КМП — качество медицинской помощи
• КоА — коэнзим А, кофермент А
• КОЕ — колониеобразующая единица
• КОК — комбинированные оральные контрацептивы
• КПТ — когнитивно-поведенческая терапия
• КР — клинические рекомендации
• КСД — конечно-систолическое давление
• КСО — конечно-систолический объем
• КСР — конечно-систолический размер
• КТ — компьютерная томография
• КТВР — компьютерная томография высокого разрешения
• КТГ — кардиотокография
• КФК — креатинфосфокиназа
• КЩС — кислотно-щелочное состояние
• л — литр
• л/о — ложноотрицательный
• л/п — ложноположительный
• ЛА — легочная артерия
• ЛАГ — легочная артериальная гипертензия лат. — латинский
• ЛГ — лютеинизирующий гормон
• ЛДГ — лактатдегидрогеназа
• ЛЖ — левый желудочек
• ЛОР — имеющий отношение к оториноларингологии (ЛОР-врач, ЛОР-органы)
• ЛП — лекарственный препарат
• ЛПВП — липопротеины высокой плотности
• ЛПНП — липопротеины низкой плотности
• ЛПОНП — липопротеины очень низкой плотности
• ЛПУ — лечебно-профилактическое учреждение ЛС — лекарственное средство
• ЛУ — лимфатический(ие) узел(лы)
• ЛФК — лечебная физкультура
• м.б. — может (мог, могут, могли) быть
• М/Ж — соотношение мужчин и женщин
• максД — максимальная доза
• максНД — максимальная начальная доза
• максРД — максимальная разовая доза
• максСД — максимальная суточная доза
• МАНК — метод амплификации нуклеиновых кислот
• МАО — моноаминоксидаза
• МВП — мочевыводящие пути
• мг — миллиграмм
• МДБ — мышечная дистрофия Беккера
• МДД — мышечная дистрофия Дюшенна
• МДМА — метилендиоксиметамфетамин
• ME — международная единица
• мед. — медицинский
• мес — месяц
• МЖ — молочная железа
• МЖП — межжелудочковая перегородка
• М3 — министерство здравоохранения
• мин — минут(а)
• минД — минимальная доза
• минСД — минимальная суточная доза
• МКБ — мочекаменная болезнь
• МКБ-10 — Международная классификация болезней 10-го пересмотра
• МКБ-11 —Международная классификация болезней 11-го пересмотра
• мкВ — микровольт
• мкг — микрограмм
• МКК — малый круг кровообращения
• мкл — микролитр
• мл — миллилитр
• млн — миллион
• млрд — миллиард
• мм — миллиметр
• мм рт.ст. — миллиметр ртутного столба
• ммоль — миллимоль
• МНН — международное непатентованное наименование
• МНО — международное нормализованное отношение
• МО — медицинская организация
• МП — медицинская помощь
• МПС — мочеполовая система
• МР — магнитно-резонансный
• МР-венография — МРТ вен и синусов головного мозга мРНК — матричная РНК
• МРТ — магнитно-резонансная томография
• МРХПГ — магнитно-резонансная холангиопанкреатография
• мс — миллисекунда
• МСКТ — мультиспиральная компьютерная томогра-
• фия
• МСЭ — медико-социальная экспертиза
• МТ — масса тела
• мтДНК — митохондриальная дезоксирибонуклеиновая кислота
• МТР — масса тела при рождении
• н.э. — нашей эры
• НА — нервная анорексия
• НАД — никотинамидадениндинуклеотид
• НАДН — никотинамидадениндинуклеотид (восстановленный)
• НАДФ — никотинамидадениндинуклеотидфосфат
• НАЖБП — неалкогольная жировая болезнь печени напр. — например
• НАСГ — неалкогольный стеатогепатит
• НБ — нервная булимия
• НДО — негативный детский опыт
• нед — недели
• нем. — немецкий
• НИВЛ — неинвазивная вентиляция легких
• НЛР — нежелательная лекарственная реакция
• нм — нанометр
• НМГ — низкомолекулярный гепарин
• НМИЦ — национальный медицинский исследовательский центр
• НМП — неотложная медицинская помощь
• НМТ — низкая масса тела
• НПА — нормативно-правовой акт
• НПВ — нижняя полая вена
• НПВС — нестероидные противовоспалительные средства
• НС — нервная система
• НСГ — нейросонография
• НЭК — некротический энтероколит
• НЯК — неспецифический язвенный колит
• ОАК — общий анализ крови
• ОАМ — общий анализ мочи
• ОАП — открытый артериальный проток
• ОБП — органы брюшной полости
• ОГБ — острая горная болезнь
• ОГМ — отек головного мозга
• ОДН — острая дыхательная недостаточность
• ОДП — обструкция дыхательных путей
• ОЖСС — общая железосвязывающая способность сыворотки
• ОЗ — организация здравоохранения
• ок. — около
• ОКР — обсессивно-компульсивное расстройство
• ОКС — острый коронарный синдром
• ОЛЛ — острый лимфобластный лейкоз
• ОМП - оказание медицинской помощи
• ОМС — обязательное медицинское страхование
• ОМТ — органы малого таза
• ОНМК — острое нарушение мозгового кровообращения
• ОНМП — отделение неотложной (медицинской) помощи
• ОНМТ — очень низкая масса тела
• ООЗ — органы (организации/управления) здравоохранения
• ООЛ — остаточный объем легких
• ООН — Организация Объединенных Наций
• ОПЖ — ожидаемая продолжительность жизни
• ОПН — острая почечная недостаточность
• ОПП — острое повреждение почек
• ОПСС — общее периферическое сосудистое сопротивление
• ОРВИ — острая респираторная вирусная инфекция
• ОРДС — острый респираторный дистресс-синдром
• ОРЗ — острое респираторное заболевание
• ОРИТ — отделение реанимации и интенсивной терапии (ICU)
• ОСВО — общее содержание воды в организме
• ОФВ — объем форсированного выдоха
• ОФВ₁ — объем форсированного выдоха за 1-ю секунду
• ОЦК — объем циркулирующей крови
• п.з. — поле зрения (микроскопа)
• п/к — подкожно
• ПАВ — психоактивные вещества
• ПВ — протромбиновое время
• ПВК — периферический венозный катетер
• ПВЛ — перивентрикулярная лейкомаляция
• Пг — простагландин
• ПГГ — программа государственных гарантий оказания гражданам РФ бесплатной медицинской помощи
• ПДКВ — положительное давление конца выдоха (PEEP)
• ПЖ — правый желудочек
• ПЖЖ — поджелудочная железа
• ПЖК — подкожная жировая клетчатка (гиподерма)
• ПКА — почечный канальцевый ацидоз
• ПКМД — поясно-конечностная мышечная дистрофия
• ПЛСГ — пятнистая лихорадка Скалистых гор
• ПМДР — предменструальное дисфорическое расстройство
• ПМК — пролапс митрального клапана
• ПМС — предменструальный синдром
• ПМСП — первичная медико-санитарная помощь
• ПНА — передняя нисходящая артерия
• ПНЖК — полиненасыщенные жирные кислоты
• ПОРИТ — педиатрическое отделение реанимации и интенсивной терапии
• ПОТ — постуральная ортостатическая тахикардия
• ППВ — пневмококковая полисахаридная вакцина
• ППОАК — прямые пероральные антикоагулянты ППТ — площадь поверхности тела
• ПСА — простатоспецифический антиген
• ПСВ — пиковая скорость выдоха
• ПСВХ — прогрессирующий семейный внутрипеченочный холестаз
• ПТ — психотерапия
• ПТВ — протромбиновое время
• ПТГ — паратиреоидный гормон
• ПТИ — протромбиновый индекс
• ПТСР — посттравматическое стрессовое расстройство
• ПФЭ — пищевой фолатный эквивалент
• ПЦР — полимеразная цепная реакция
• ПШГ — пурпура Шенлейна-Геноха
• ПЩЖ — паращитовидные железы
• ПЭТ — позитронно-эмиссионная томография р/ —раз в ... (с, мин, ч, сут и т.п.)
• РА — ревматоидный артрит
• РААС — ренин-ангиотензин-альдостероновая система
• разг. — разговорный
• разл. — различный
• РАС — расстройство аутистического спектра
• РДС — респираторный дистресс-синдром
• рим. — римский
• РИФ — реакция иммунофлюоресценции
• РКИ — рандомизированные клинические исследования
• РКМП — рестриктивная кардиомиопатия
• РИГА — реакция непрямой гемагглютинации
• РНК — рибонуклеиновая кислота
• РОГК — рентгенография (рентгенограмма) органов грудной клетки
• РОЛСНС — рекомендации по оценке и лечению при сортировке в неотложных ситуациях
• РИГА — реакция прямой гемагглютинации
• р-р — раствор
• р-ритель — растворитель
• РРК — рецепторы ретиноевой кислоты
• РРМ — расширенные реанимационные мероприятия
• РСВ — респираторно-синцитиальный вирус
• РСД — расстройство стереотипных движений
• РСК — реакция связывания комплемента
• РТГА — реакция торможения гемагглютинации
• РТНГА — реакция торможения непрямой гемагглютинации
• РФ — Российская Федерация
• РХР — ретиноевые Х-рецепторы
• РЧА — радиочастотная абляция
• РЭС — ретикулоэндотелиальная система
• с — секунда
• св-во — свойство
• СВДС — синдром внезапной детской смерти
• СГЯ — синдром гиперстимуляции яичников
• СД — сахарный диабет
• СД-1 — сахарный диабет 1 -го типа
• СД-2 — сахарный диабет 2-го типа
• СДВГ — синдром дефицита внимания и гиперактивности
• СЕ — субъединица
• СЖК — свободные жирные кислоты
• СЗСТ — системное(ые) заболевание(я) соединительной ткани
• СИЗ — средства индивидуальной защиты
• СИОЗС — селективный ингибитор обратного захвата серотонина
• СИОЗСН — селективные ингибиторы обратного захвата серотонина и норэпинефрина
• СКА — серповидно-клеточная анемия
• СКВ — серповидно-клеточная болезнь
• СКВ — системная красная волчанка
• СКФ — скорость клубочковой фильтрации
• СЛР — сердечно-легочная реанимация
• см — сантиметр
• см вод.ст. — сантиметр водяного столба
• СМЖ — спинномозговая жидкость
• СМИ — средства массовой информации
• СМО — страховая медицинская организация
• СМП — скорая медицинская помощь
• СМЭ — судебно-медицинская экспертиза
• СН — сердечная недостаточность
• СНСАДГ — синдром неадекватной секреции АДГ
• СОАС — синдром обструктивного апноэ сна (во сне)
• совр. — современный
• СОЭ — скорость оседания эритроцитов
• СПИД — синдром приобретенного иммунодефицита
• СПКЯ — синдром поликистозных яичников
• СПОН — синдром полиорганной недостаточности
• СРБ — С-реактивный белок
• СРК — синдром раздраженного кишечника
• СрСД — средняя суточная доза
• ССВ — синдром Стерджа-Вебера
• ССВР — синдром системной воспалительной реакции
• ССЗ — сердечно-сосудистые заболевания
• ССС — сердечно-сосудистая система
• СССУ — синдром слабости синусового узла
• СТ — Синдром Туретта
• СТГ — соматотропный гормон
• СТР — стойкое (хроническое) моторное или вокальное тикозное расстройство
• сут — сутки
• СХУ — синдром хронической усталости
• т.д. — так далее
• т.е. — то есть
• т.к. — так как
• т.о. — таким образом
• т.п. — тому подобное
• Т3 — трийодтиронин
• Т4 — тироксин
• ТАНК — тест амплификации нуклеиновых кислот
• ТБС — тазобедренный сустав
• ТГВ — тромбоз глубоких вен
• ТГСК — трансплантация гемопоэтических стволовых клеток
• ТИА — транзиторная ишемическая атака
• ТИАБ — тонкоигольная аспирационная биопсия
• ТМО — твердая мозговая оболочка
• TH — торговое наименование лекарственных средств
• ТПГГ — территориальная программа государственных гарантий оказания гражданам РФ бесплатной медицинской помощи
• ТПМ — травматическое повреждение мозга
• ТТ — температура тела
• ТТГ — тиреотропный гормон
• ТФР — трансформирующий фактор роста
• ТЦА — трициклические антидепрессанты
• тыс. — тысяча
• ТЭД —транзиторная эритробластопения детского возраста
• ТЭЛА — тромбоэмболия легочной артерии
• ТЭО — тромбоэмболические осложнения
• УЗДС — ультразвуковое дуплексное сканирование
• УЗИ — ультразвуковое исследование
• устар. — устаревший
• УФ — ультрафиолетовый
• УФО — ультрафиолетовое облучение
• ФАП — фельдшерско-акушерский пункт
• ФВ — фракция выброса
• ФВД — функции внешнего дыхания
• ФЖ — фибрилляция желудочков
• ФЖЕЛ — форсированная жизненная емкость легких
• ФЗ — Федеральный закон
• физиол. — физиологический
• ФК — функциональный класс
• ФКС — фиброколоноскопия
• ФКУ — фенилкетонурия
• ФН — физическая нагрузка
• ФНО — фактор некроза опухоли
• ФОМС — федеральный фонд обязательного медицинского страхования
• ФОС — фосфорорганические соединения
• ФП — фибрилляция предсердий
• фр. — французский
• ФСГ — фолликулостимулирующий гормон
• ФСГС — фокально-сегментарный гломерулосклероз
• ФЭГДС — фиброэзофагогастродуоденоскопия
• ХБП — хроническая болезнь почек
• ХГЧ — хорионический гонадотропин человека
• ХДН — хроническая дыхательная недостаточность
• хим. — химический
• ХНЗЛ — хронические неспецифические заболевания легких
• ХОБЛ — хроническая обструктивная болезнь легких
• ХПН — хроническая почечная недостаточность
• ХС — холестерин
• ХСН — хроническая сердечная недостаточность
• XT — химиотерапия
• ЦВД — центральное венозное давление
• ЦБК — центральный венозный катетер
• ЦИК — циркулирующие иммунные комплексы
• ЦМВ — цитомегаловирус
• ЦНС — центральная нервная система
• ЦОГ — циклооксигеназа
• ЦПД — церебральное перфузионное давление
• ЦСТС — церебральный сольтеряющий синдром
• ч — час
• ЧД — частота дыхания
• ЧДД — частота дыхательных движений
• ЧКВ — чрескожное коронарное вмешательство
• ЧМН — черепно-мозговые нервы
• ЧМТ — черепно-мозговая травма
• ЧН — черепные нервы
• ЧС — чувствительность/специфичность (ЧС 97%/87%)
• ЧСС — частота сердечных сокращений
• ЧТВ — частичное тромбопластиновое время
• ШКГ — шкала комы Глазго
• ШОП — шейный отдел позвоночника
• ЩЖ — щитовидная железа
• ЩФ — щелочная фосфатаза
• ЭАР — эквивалент активности ретинола
• ЭГДС — эзофагогастродуоденоскопия
• ЭДТА — этилендиаминтетрауксусная кислота (этилендиаминтетраацетат)
• ЭКГ — электрокардиография
• ЭКМО — экстракорпоральная мембранная оксигенация
• ЭКО — экстракорпоральное оплодотворение
• ЭКС — электрокардиостимулятор, элекгрокардиостимуляция
• ЭМГ — электромиография
• ЭМК — электронная медицинская карта
• ЭМП — экстренная медицинская помощь
• ЭНМП — экстренная и неотложная медицинская помощь
• ЭНМТ — экстремально низкая масса тела
• ЭРХПГ —эндоскопическая ретроградная холангиопанкреатография
• ЭТТ — эндотрахеальная трубка
• ЭхоКГ — эхокардиография
• ЭЭГ — электроэнцефалография
• ЮДМ — ювенильный дерматомиозит
• ЮИА — ювенильный идиопатический артрит
• ЯБ — язвенная болезнь
• АА — амилоид A (amyloid А)
• ААР — Американская академия педиатрии (American Academy of Pediatrics)
• AASLD — Американская ассоциация по изучению заболеваний печени (American Association for the Study of Liver Diseases)
• ABC — алгоритм неотложной помощи «дыхательные пути-дыхание-кровообращение» (Airways-Breathing-Circulation)
• АВСАЗ — белковый член АТФ-связывающей кассеты АЗ
• АВСВ11 —ген АТФ-связывающей кассеты, 11-й член подсемейства В (ATP-binding cassette, subfamily В member 11)
• АВСВ4 — ген АТФ-связывающей кассеты, 4-й член подсемейства В (ATP-binding cassette 4 gene)
• АВСС2 — ген, кодирующий 2-й член подсемейства С АТФ-связывающих кассет (ATP-binding cassette sub-family С member 2)
• ABCDE — алгоритм неотложной помощи «дыхательные пути-дыхание-кровообращение-не-врологический статус-внешний вид» (Airways-Breathing-Circulation-Disability-Exposure)
• ABCG5/G8 — гетеродимер переносчика АТФ-связывающей кассеты ABCG5 и ABCG8 (heterodimer of ATP-binding cassette transporter ABCG5 and ABCG8)
• AC — до еды (при назначениях) — ante cibum
• АСЕР — Американская коллегия врачей неотложной помощи (American College of Emergency Physicians)
• ACOG — Американская коллегия акушеров и гинекологов (American College of Obstetricians and Gynecologists)
• AHA — Американская кардиологическая ассоциация (American Heart Association)
• ALTE — очевидное опасное для жизни событие (apparent life-threatening event)
• ANP — предсердный натрийуретический пептид (atrial natriuretic peptide)
• APLS — курсы расширенных реанимационных мероприятий в педиатрии, спонсируемые Американской академией педиатрии и Американской коллегией врачей неотложной помощи (Advanced Pediatric Life Support)
• ARPKD — аутосомно-рецессивный поликистоз почек ASCVD-риск — риск развития атеросклеротического сердечно-сосудистого заболевания (Arteriosclerotic Cardiovascular Disease)
• AVPU — шкала для оценки уровня сознания («в ясном сознании»; «реакция на вербальные раздражители»; «реакция на боль»; «без сознания») (alert, verbal, pain, unresponsive)
• BCS — митохондриальный шаперон BCS1 (mitochondrial chaperone BCS1)
• BIN — биноминальная номенклатура живой природы
• B(i)PAP — режим искусственной вентиляции легких с двумя уровнями положительного давления (bilevel positive airway pressure)
• BNP — мозговой натрийуретический пептид В-типа [В (brain)-type natriuretic peptide]
• BRUE — быстро разрешившиеся необъяснимые события (brief resolved unexplained events)
• BSEP — насос выведения солей желчных кислот (bile salt export pump)
• CADASIL — церебральная аутосомно-доминантная артериопатия с подкорковыми инфарктами и лейкоэнцефалопатией (cerebral autosomal dominant arteriopathy with subcortical infarcts and leukoencephalopathy)
• CAPS — криопирин-ассоциированный периодический синдром (cryopyrin-associated periodic syndrome)
• CBIT — комплексное поведенческое воздействие при тиках (comprehensive behavioral intervention for tics)
• CD — кластеры дифференцировки (clusters of differentiation)
• CDC — Центр по контролю и профилактике заболеваний, США (Center for Disease Control and Prevention)
• CDG — врожденные нарушения гликозилирования (congenital disorder of glycosylation)
• CFTR — трансмембранный регулятор муковисцидоза (cystic fi brosis transmembrane regulator)
• CH — гемолитический комплемент (hemolytic complement)
• CLLS — шкала оценки острой горной болезни озера Луиз у детей (Children’s Lake Louise Score)
• сМОАТ — каналикулярный мультиспецифический органический анионный транспортер (canalicular multispecific organic anion transporter)
• CMT — Шарко-Мари-Тута болезнь (Charcot-Marie-Tooth disease)
• CPAP — постоянное положительное давление в дыхательных путях (constant positive airway pressure)
• CTLA — цитотоксический Т-лимфоцитарный антиген (cytotoxic T-lymphocytic antigen)
• CYP — цитохром общий
• DAF — фактор ускорения распада (decay-accelerating factor)
• DAMP — рецепторы молекулярного фрагмента, ассоциированного с повреждением (damage-associated molecular pattern)
• DASH — диетические подходы к борьбе с гипертонией (dietary approaches to stop hypertension)
• DGAT1 — диацилглицерин-1-ацилтрансфераза (diacylglycerol acyltransferase 1)
• DHR — дигидрородамин (dihydrorhodamine)
• DSM — Диагностическое и статистическое руководство по психическим расстройствам (Diagnostic and Statistical Manual of Mental Disorders)
• EAST syndrome — эпилепсия, атаксия, сенсоневральная тугоухость и тубулопатия (epilepsy, ataxia, sensorineural hearing loss, and tubulopath)
• EBM — доказательная медицина (evidance based medicine)
• EPCAM — молекула адгезии эпителиальных клеток (epithelial cell adhesion molecule)
• ESC — Европейское общество кардиологии (European Society of Cardiology)
• EXIT — лечение плода вне матки во время родов (ех utero intrapartum treatment)
• FcRs — Fc-рецепторы — белок, расположенный на поверхности нескольких видов клеток иммунной системы (естественных киллеров, макрофагов, нейтрофилов и тучных клеток) FDA — Комитет по контролю за лекарственными веществами и пищевыми добавками, США (Food and Drug Administration)
• FFR — фракционный резерв кровотока (fractional flow reserve)
• FGF-23 — фактор роста фибробластов-23 (fibroblast growth factor-23)
• FIC 1 —семейный внутрипеченочный холестаз 1-го типа, болезнь Байлера (familial intrahepatic cholestasis)
• FiO₂ — фракция кислорода (во вдыхаемом воздухе, газовой смеси)
• FISH — флуоресцентная in situ гибридизация (fluorescence in situ hybridization)
• FLAIR — восстановление инверсии с ослаблением жидкости (fluid-attenuated inversion recovery)
• FMF — семейная средиземноморская лихорадка (familial mediterranean fever)
• FODMAP — ферментируемые олиго-, ди-, моносахариды и полиолы (fermentable oligo-, di-, monosaccharides and polyols)
• FoxP3 —транскрипционный фактор семейства Forkhead Р3
• GATA — gata-связывающий белок
• DVL — трансплантат против лейкоза (graft versus leukemia)
• HADH — гидроксилацил-КоА-дегидрогеназа (Hydroxyacyl-Coenzyme A dehydrogenase)
• HAV — вирус гепатита В (hepatitis A virus)
• Hb — гемоглобин
• HBcAg — сердцевинный антиген вируса гепатита В HBeAg — антиген вируса гепатита В
• HBsAg — поверхностный антиген вируса гепатита В
• HBV — вирус гепатита В (hepatitis В virus)
• HCV — вирус гепатита С (hepatitis С virus)
• HDV — вирус гепатита D (hepatitis D virus)
• HELLP — HELLP-синдром (гемолиз, повышенный уровень печеночных ферментов, низкий уровень тромбоцитов) (hemolysis, elevated liver enzymes, low platelets)
• HEV — вирус гепатита E (hepatitis E virus)
• HFNC — назальные канюли высокого потока (heated, high-flow nasal cannula)
• Hib — гемофильная палочка типа В (Haemophilus influenzae В type)
• HLA — лейкоцитарные антигены (главного комплекса гистосовместимости) человека (human leukocyte antigens)
• HR — отношение рисков (hazard ratio)
• HRT — терапия отмены привычки (habit reversal therapy)
• Ht — гематокрит
• HTLV — Т-лимфотропный вирус человека (human T-lymphotropic virus)
• IFN — интерферон
• Ig — иммуноглобулин
• IgA — иммуноглобулин A
• IgE — иммуноглобулин E
• IgG — иммуноглобулин G
• IgM — иммуноглобулин M
• IL — интерлейкин
• IPEX — Х-сцепленный синдром иммунной дисрегуляции, полиэндокринопатии и энтеропатии (immunedysregulation polyendocrinopathy enteropathy, X-linked)
• IQ — коэффициент умственного развития (intelligence quotient)
• JAK — янус-киназа (janus kinase)
• LFA — антиген, активирующий функцию лейкоцитов (lymphocyte function-associated antigen)
• LT — лейкотриен
• MALT — лимфоидная ткань слизистой оболочки (mucosa-associated lymphoid tissue)
• MASP — МСЛ-ассоциированная сериновая протеаза (MBL-associated serine protease)
• MBL — маннозосвязывающий лектин (mannose-binding lectin)
• MCP — мембранный белок-кофактор (membrane cofactor protein)
• MDR3 — белок множественной лекарственной устойчивости 3 (multidrug resistance protein 3)
• MELAS — митохондриальная энцефалопатия, лактоацидоз и инсультоподобные эпизоды (mitochondrial encephalomyopathy, lactic acidosis, and stroke-like episodes)
• MELD — модель для оценки терминальной стадии заболеваний печени, предназначена для оценки относительной тяжести заболевания и прогноза жизни у пациентов с терминальной стадией печеночной недостаточности (ожидающих трансплантации печени) (model for end-stage liver disease)
• MERRF — миоклоническая эпилепсия с рваными красными волокнами (myoclonic epilepsy with ragged red fibers)
• MHC — главный комплекс гистосовместимости (major histocompatibility complex)
• Mr — кажущаяся молекулярная масса
• MRP — белок с множественной лекарственной устойчивостью (multidrug-resistant protein)
• MRSA — метициллинрезистентный золотистый стафилококк
• MSSA — метициллинчувствительный золотистый стафилококк
• mTOR — мишень рапамицина у млекопитающих (mammalian target of rapamycin)
• NB! — важно, обратить внимание (nota bene)
• NICE — Национальный институт здоровья и клинического совершенствования (качества медицинской помощи) Великобритании (National Institute for Health and Clinical Excellence)
• NK — естественные клетки-киллеры (natural killer) NMDA — И-метил-В-аспартат (N-methyl-D-aspartate)
• NNT — число больных, которых необходимо пролечить, чтобы достичь какого-то указанного эффекта (number need to treatment)
• OR — отношение шансов (odds ratio)
• paCO₂ — парциальное давление углекислого газа в артериальной крови
• PALS — курсы расширенных реанимационных мероприятий в педиатрии (Pediatric Advanced Life Support)
• PANDAS — аутоиммунное нейропсихиатрическое расстройство в детском возрасте, ассоциированное со стрептококковой инфекцией (pediatric autoimmune neuropsychiatric disorder associated with streptococcal infection)
• PANS — острый нейропсихиатрический синдром в детском возрасте (pediatric acute-onset neuropsychiatric syndrome)
• paO₂ — парциальное давление кислорода в артериальной крови
• PAS — фуксинсернистая кислота, реактив Шиффа (periodic acid-Shiff)
• PC — после еды (при назначениях) (post cibum) рСО₂ — парциальное давление углекислого газа
• PCSK-9 — пропротеиновая конвертаза субтилизинкексинового типа 9 (proprotein convertase subtilisin/kexin type 9)
• PFAPA — периодическая лихорадка с афтозным стоматитом, фарингитом и лимфаденитом (periodic fevers with aphthous stomatitis, pharyngitis and adenitis)
• PFIC — семейный внутрипеченочный холестаз (familial intrahepatic cholestasis)
• Pg — простагландин
• pH — водородный показатель
• PIM — показатель летального исхода у детей (pediatric index of mortality)
• piO₂ — парциальное давление кислорода во вдыхаемом воздухе
• рО₂ — парциальное давление кислорода
• POLG — субъединица ДНК-полимеразы γ
• PRISA II — оценка риска госпитализации у детей II (pediatric risk of admission)
• PRISM — риск летального исхода у детей (pediatric risk of mortality)
• PRN — при (по) необходимости (pro re nata — при возникновении обстоятельств)
• PRSS — ген сериновой протеазы
• PS — примечание (post scriptum)
• PUVA-терапия — псорален-ультрафиолет А-терапия (psoralen and ultraviolet А)
• Q#H — каждые # часов (при назначениях) (quaque... hora)
• QAM — каждое утро (при назначениях) (quaque ante meridiem)
• QPM — каждый вечер (при назначениях) (quaque post meridiem)
• RAG — ген, активирующий рекомбиназу
• RePEAT — пересмотренный инструмент для оценки педиатрической неотложной медицинской помощи (Revised Pediatric Emergency Assessment Tool)
• RF — ревматоидный фактор
• Rh — резус(-фактор)
• Rh«-» — резус-отрицательн(ый)
• Rh«+» — резус-положительн(ый)
• ROHHAD — быстро развивающееся ожирение с дисфункцией гипоталамуса, гиповентиляцией и спонтанной дисрегуляцией (rapid-onset obesity with hypothalamic dysfunction, hypoventilation and autonomic dysregulation)
• ROMK — почечный наружный мозговой калиевый канал (renal outer medullary К)
• RR — относительный риск (relative risk или risk ratio)
• RW — реакция Вассермана (reaction of Wassermann)
• SaO₂ — сатурация артериальной крови кислородом
• SatO₂ — насыщение крови кислородом
• ScvO₂ — насыщение кислородом центральной венозной крови (central venous oxygen saturation)
• SD — стандартное отклонение (standart deviation)
• SFTPA — ген сурфактантного белка A
• SFTPB — ген сурфактантного белка В
• SFTPC — ген сурфактантного белка С
• SPINK — ингибитор сериновой протеазы (serine protease inhibitor kazal)
• SpO₂ — насыщение (сатурация) гемоглобина кислородом
• spp. — виды (при родовом имени микроорганизмов)
• Src. — источник информации, библиографическая ссылка (source)
• STAT1 — сигнальный преобразователь и активатор транскрипции 1 (signal transducer and activator of transcription)
• TA — Международная анатомическая терминология
• TCR — Т-клеточный рецептор (T-cell receptor)
• TIPS —трансъюгулярный внутрипеченочный портосистемный шунт; малоинвазивная хирургическая операция, проводимая под контролем рентгеноскопии (transjugular intrahepatic portosystemic shunt)
• TLR — Толл-подобный рецептор (Toll-like receptor)
• TNF — фактор некроза опухоли (tumor necrosis factor)
• TORCH — токсоплазмоз, краснуха, цитомегаловирусная инфекция, герпес и другие инфекции (toxoplasmosis, other infections, rubella, cytomegalovirus herpes simplex)
• TPM — мутация тропомиозина (mutation of the tropomyosin)
• TRAP — синдром обратной артериальной перфузии близнецов (twin reversed arterial perfusion)
• TRAPS — периодический синдром, ассоциированный с рецептором фактора некроза опухоли (tumor necrosis factor receptor-associated periodic syndrome)
• TRPM — катионный канал с транзиторным рецепторным потенциалом, подсемейство М (transient receptor potential cation channel, subfamily M)
• VEGF — фактор роста эндотелия сосудов (vascular endothelial growth factor)
• VO₂ — потребление кислорода
• WPW — синдром Вольфа-Паркинсона-Уайта (Wolff-Parkinson-White)
• XLA — Х-сцепленная агаммаглобулинемия (X-linked agammaglobulinemia)
• αDG-RD — дистрофии, связанные с α-дистрогликанами (alpha dystroglycan-related dystrophies)
• β-ХГЧ — β-субъединица хорионического гонадотропина человека

В ходе подготовки статей по заболеваниям органов дыхания в терапии для пользователей сайта МедУнивер использованы труды следующих авторов:

1. Smith SM, Schroeder K, Fahey T. Over-the-counter (OTC) medications for acute cough in children and adults in community settings. Cochrane Database Syst Rev. 2014; 11: CD001831.
2. Abers MS, Sandvall BP, Sampath R, et al. Postobstructive pneumonia: an underdescribed syndrome. Clin Infect Dis. 2016; 62: 957–961.
3. Branche A, Neeser O, Mueller B, et al. Procalcitonin to guide antibiotic decision making. Curr Opin Infect Dis. 2019. [Epub ahead of print.]
4. Gadsby NJ, Russell CD, McHugh MP, et al. Comprehensive molecular testing for respiratory pathogens in community-acquired pneumonia. Clin Infect Dis. 2016; 62: 817–823.
5. Jain S, Self WH, Wunderink RG, et al. Community-acquired pneumonia requiring hospitalization among U.S. adults. N Engl J Med. 2015; 373: 415–427.
6. Wunderink RG, Self WH, Anderson EJ, et al. Pneumococcal community-acquired pneumonia detected by serotype-specific urinary antigen detection assays. Clin Infect Dis. 2018; 66: 1504–1510.
7. Musher DM, Abers MS, Bartlett JG. Evolving understanding of the causes of pneumonia in adults, with special attention to the role of pneumococcus. Clin Infect Dis. 2017; 65: 1736–1744.
8. Lee JS, Giesler DL, Gellad WF, et al. Antibiotic therapy for adults hospitalized with community-acquired pneumonia: a systematic review. JAMA. 2016; 315: 593–602.
9. Wunderink RG. Guidelines to manage community-acquired pneumonia. Clin Chest Med. 2018; 39: 723–731.
10. Froes F, Pereira JG, Povoa P. Outpatient management of community-acquired pneumonia. Curr Opin Infect Dis. 2018; 31: 170–176.
11. Violi F, Cangemi R, Falcone M, et al. Cardiovascular complications and short-term mortality risk in community-acquired pneumonia. Clin Infect Dis. 2017; 64: 1486–1493.
12. Dean NC, Griffith PP, Sorensen JS, et al. Pleural effusions at first ED encounter predict worse clinical outcomes in patients with pneumonia. Chest. 2016; 149: 1509–1515.
13. Mangen MJ, Huijts SM, Bonten MJ, et al. The impact of community-acquired pneumonia on the health-related quality-of-life in elderly. BMC Infect Dis. 2017; 17: 1–9.
14. Neill S, Dean N. Aspiration pneumonia and pneumonitis: a spectrum of infectious/noninfectious diseases affecting the lung. Curr Opin Infect Dis. 2019. [Epub ahead of print.]
15. Johnstone KJ, Chang AB, Fong KM, et al. Inhaled corticosteroids for subacute and chronic cough in adults. Cochrane Database Syst Rev. 2013; 3: CD009305.
16. Vertigan AE, Kapela SL, Ryan NM, et al. Pregabalin and speech pathology combination therapy for refractory chronic cough: a randomized controlled trial. Chest. 2016; 149: 639–648.
17. Chamberlain Mitchell SA, Garrod R, Clark L, et al. Physiotherapy, and speech and language therapy intervention for patients with refractory chronic cough: a multicentre randomised control trial. Thorax. 2017; 72: 129–136.
18. Kalhan R, Dransfield MT, Colangelo LA, et al. Respiratory symptoms in young adults and future lung disease. The CARDIA lung study. Am J Respir Crit Care Med. 2018; 197: 1616–1624.
19. Sarkar M, Madabhavi I, Niranjan N, et al. Auscultation of the respiratory system. Ann Thorac Med. 2015; 10: 158–168.
20. Irwin RS, French CL, Chang AB, et al. Classification of cough as a symptom in adults and management algorithms: CHEST guideline and expert panel report. Chest. 2018; 153: 196–209.
21. Tarlo SM, Altman KW, Oppenheimer J, et al. Occupational and environmental contributions to chronic cough in adults: chest expert panel report. Chest. 2016; 150: 894–907.
22. Boulet LP, Turmel J, Irwin RS. Cough in the athlete: CHEST guideline and expert panel report. Chest. 2017; 151: 441–454.
23. Vertigan AE. Somatic cough syndrome or psychogenic cough — what is the difference? J Thorac Dis. 2017; 9: 831–838.
24. Smith JA, Woodcock A. Chronic cough. N Engl J Med. 2016; 375: 1544–1551.
25. Gibson P, Wang G, McGarvey L, et al. Treatment of unexplained chronic cough: CHEST guideline and expert panel report. Chest. 2016; 149: 27–44.
26. Kahrilas PJ, Altman KW, Chang AB, et al. Chronic cough due to gastroesophageal reflux in adults: CHEST guideline and expert panel report. Chest. 2016; 150: 1341–1360.
27. Hale ZE, Singhal A, Hsia RY. Causes of shortness of breath in the acute patient: a national study. Acad Emerg Med. 2018; 25: 1227–1234.
28. Januzzi JL Jr, Chen-Tournoux AA, Christenson RH, et al. N-terminal pro-B-type natriuretic peptide in the emergency department: the ICON-RELOADED study. J Am Coll Cardiol. 2018; 71: 1191–1200.
29. Huang W, Resch S, Oliveira RK, et al. Invasive cardiopulmonary exercise testing in the evaluation of unexplained dyspnea: insights from a multidisciplinary dyspnea center. Eur J Prev Cardiol. 2017; 24: 1190–1199.
30. Takahashi K, Kondo M, Ando M, et al. Effects of oral morphine on dyspnea in patients with cancer: response rate, predictive factors, and clinically meaningful change (CJLSG1101). Oncologist. 2019. [Epub ahead of print.]
31. Gavelli F, Patrucco F, Statti G, et al. Mild-to-moderate hemoptysis: a diagnostic and clinical challenge. Minerva Med. 2018; 109: 239–247.
32. Panda A, Bhalla AS, Goyal A. Bronchial artery embolization in hemoptysis: a systematic review. Diagn Interv Radiol. 2017; 23: 307–317.
33. Kirsch J, Brown RKJ, Henry TS, et al. ACR appropriateness Criteria® acute chest pain—suspected pulmonary embolism. J Am Coll Radiol. 2017; 14: s2–s12.
34. Kim HS, Lee KS, Ohno Y, et al. PET/CT versus MRI for diagnosis, staging, and follow-up of lung cancer. J Magn Reson Imaging. 2015; 42: 247–260.
35. Koh Y, Chua MT, Ho WH, et al. Assessment of dyspneic patients in the emergency department using point-of-care lung and cardiac ultrasonography—a prospective observational study. J Thorac Dis. 2018; 10: 6221–6229.
36. Salahuddin M, Karanth S, Ocazionez D, et al. Clinical characteristics and etiologies of miliary nodules in the US; a single center study. Am J Med. 2019. [Epub ahead of print.]
37. Carter BW, Benveniste MF, Madan R, et al. ITMIG classification of mediastinal compartments and multidisciplinary approach to mediastinal masses. Radiographics. 2017; 37: 413–436.
38. Godfrey MS, Jankowich MD. The vital capacity is vital: epidemiology and clinical significance of the restrictive spirometry pattern. Chest. 2016; 149: 238–251.
39. Thacher JD, Schultz ES, Hallberg J, et al. Tobacco smoke exposure in early life and adolescence in relation to lung function. Eur Respir J. 2018; 51: 1–9.
40. Dempsey TM, Scanlon PD. Pulmonary function tests for the generalist: a brief review. Mayo Clin Proc. 2018; 93: 763–771.
41. Cid-Ju?rez S, Thiri?n-Romero I, Torre-Bouscoulet L, et al. Inspiratory capacity and vital capacity of healthy subjects 9–81 years of age at moderate-high altitude. Respir Care. 2019; 64: 153–160.
42. Graham BL, Brusasco V, Burgos F, et al. 2017 ERS/ATS standards for single-breath carbon monoxide uptake in the lung. Eur Respir J. 2017; 49: 1–31.
43. Clay RD, Iyer VN, Reddy DR, et al. The «complex restrictive» pulmonary function pattern: clinical and radiologic analysis of a common but previously undescribed restrictive pattern. Chest. 2017; 152: 1258–1265.
44. Cuttica MJ, Colangelo LA, Shah SJ, et al. Loss of lung health from young adulthood and cardiac phenotypes in middle age. Am J Respir Crit Care Med. 2015; 192: 76–85.
45. Sakata KK, Klassen CL, Bollin KB, et al. Microbiologic yield of bronchoalveolar lavage specimens from stem cell transplant recipients. Transpl Infect Dis. 2017; 19: 1–17.
46. Yang H, Sawyer AM. The effect of adaptive servo ventilation (ASV) on objective and subjective outcomes in Cheyne-Stokes respiration (CSR) with central sleep apnea (CSA) in heart failure (HF): a systematic review. Heart Lung. 2016; 45: 199–211.
47. Masa JF, Corral J, Caballero C, et al. Non-invasive ventilation in obesity hypoventilation syndrome without severe obstructive sleep apnoea. Thorax. 2016; 71: 899–906.
48. O’Connor CM, Whellan DJ, Fiuzat M, et al. Cardiovascular outcomes with minute ventilationtargeted adaptive servo-ventilation therapy in heart failure: the CAT-HF trial. J Am Coll Cardiol. 2017; 69: 1577–1587.
49. Orr JE, Malhotra A, Sands SA. Pathogenesis of central and complex sleep apnoea. Respirology. 2017; 22: 43–52.
50. Grimm W, Kesper K, Cassel W, et al. Cheyne-Stokes respiration during wakefulness in patients with chronic heart failure. Sleep Breath. 2017; 21: 419–426.
51. Mansukhani MP, Kolla BP, Naessens JM, et al. Effects of adaptive servoventilation therapy for central sleep apnea on health care utilization and mortality: a population-based study. J Clin Sleep Med. 2019; 15: 119–128.
52. DiMarco AF. Diaphragm pacing. Clin Chest Med. 2018; 39: 459–471.
53. Weese-Mayer DE, Rand CM, Zhou A, et al. Congenital central hypoventilation syndrome: a bedside-to-bench success story for advancing early diagnosis and treatment and improved survival and quality of life. Pediatr Res. 2017; 81: 192–201.
54. Bishara J, Keens TG, Perez IA. The genetics of congenital central hypoventilation syndrome: clinical implications. Appl Clin Genet. 2018; 11: 135–144.
55. Diep B, Wang A, Kun S, et al. Diaphragm pacing without tracheostomy in congenital central hypoventilation syndrome patients. Respiration. 2015; 89: 534–538.
56. Piper A. Obesity hypoventilation hypoventilation syndrome: weighing in on therapy options. Chest. 2016; 149: 856–868.
57. McKeever T, Mortimer K, Wilson A, et al. Quadrupling inhaled glucocorticoid dose to abort asthma exacerbations. N Engl J Med. 2018; 378: 902–910.
58. Bateman ED, Reddel HK, O’Byrne PM, et al. As-needed budesonide-formoterol versus maintenance budesonide in mild asthma. N Engl J Med. 2018; 378: 1877–1887.
59. O’Byrne PM, FitzGerald JM, Bateman ED, et al. Inhaled combined budesonide-formoterol as needed in mild asthma. N Engl J Med. 2018; 378: 1865–1876.
60. Beasley RW, Holliday M, Reddel HK. Controlled trial of as-needed budesonide/formoterol in mild adult asthma. N Engl J Med. 2019; 380: 2020–2030.
61. Busse WW, Bateman ED, Caplan AL, et al. Combined analysis of asthma safety trials of long-acting ?2-agonists. N Engl J Med. 2018; 378: 2497–2505.
62. Miligkos M, Bannuru RR, Alkofide H, et al. Leukotriene-receptor antagonists versus placebo in the treatment of asthma in adults and adolescents: a systematic review and meta-analysis. Ann Intern Med. 2015; 163: 756–767.
63. Normansell R, Walker S, Milan SJ, et al. Omalizumab for asthma in adults and children. Cochrane Database Syst Rev. 2014; 1: CD003559.
64. Farne HA, Wilson A, Powell C, et al. Anti-IL5 therapies for asthma. Cochrane Database Syst Rev. 2017; 9: CD010834.
65. Castro M, Zangrilli J, Wechsler ME, et al. Reslizumab for inadequately controlled asthma with elevated blood eosinophil counts: results from two multicentre, parallel, double-blind, randomised, placebo-controlled, phase 3 trials. Lancet Respir Med. 2015; 3: 355–366.
66. Nair P, Wenzel S, Rabe KF, et al. Oral glucocorticoid-sparing effect of benralizumab in severe asthma. N Engl J Med. 2017; 376: 2448–2458.
67. Rabe KF, Nair P, Brusselle G, et al. Efficacy and safety of dupilumab in glucocorticoid-dependent severe asthma. N Engl J Med. 2018; 378: 2475–2485.
68. Castro M, Corren J, Pavord ID, et al. Dupilumab efficacy and safety in moderate-to-severe uncontrolled asthma. N Engl J Med. 2018; 378: 2486–2496.
69. Corren J, Parnes JR, Wang L, et al. Tezepelumab in adults with uncontrolled asthma. N Engl J Med. 2017; 377: 936–946.
70. Gibson PG, Yang IA, Upham JW, et al. Effect of azithromycin on asthma exacerbations and quality of life in adults with persistent uncontrolled asthma (AMAZES): a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet. 2017; 390: 659–668.
71. Honkoop PJ, Loijmans RJ, Termeer EH, et al. Symptom- and fraction of exhaled nitric oxide-driven strategies for asthma control: a cluster-randomized trial in primary care. J Allergy Clin Immunol. 2015; 135: 682–688.
72. Ebmeier S, Thayabaran D, Braithwaite I, et al. Trends in international asthma mortality: analysis of data from the WHO Mortality Database from 46 countries (1993–2012). Lancet. 2017; 390: 935–945.
73. Woessner KM. Update on aspirin-exacerbated respiratory disease. Curr Allergy Asthma Rep. 2017; 17: 1–19.
74. McCracken JL, Veeranki SP, Ameredes BT, et al. Diagnosis and management of asthma in adults: a review. JAMA. 2017; 318: 279–290.
75. Aaron SD, Boulet LP, Reddel HK, et al. Under-diagnosis and over-diagnosis of asthma. Am J Respir Crit Care Med. 2018; 198: 1012–1020.
76. Aaron SD, Vandemheen KL, FitzGerald JM, et al. Reevaluation of diagnosis in adults with physician-diagnosed asthma. JAMA. 2017; 317: 269–279.
77. Meghdadpour S, Lugogo NL. Medication regimens for managing stable asthma. Respir Care. 2018; 63: 759–772.
78. Global Initiative on Asthma. Global strategy for asthma management and prevention; 2018. https://ginasthma.org/wp-content/uploads/2018/04/wms-GINA-2018-report-V1.3-002.pdf. Accessed March 20, 2019.
79. Israel E, Reddel HK. Severe and Difficult-to-treat asthma in adults. N Engl J Med. 2017; 377: 965–976.
80. Pretolani M, Bergqvist A, Thabut G, et al. Effectiveness of bronchial thermoplasty in patients with severe refractory asthma: clinical and histopathologic correlations. J Allergy Clin Immunol. 2017; 139: 1176–1185.
81. Reddel HK, Busse WW, Pedersen S, et al. Should recommendations about starting inhaled corticosteroid treatment for mild asthma be based on symptom frequency: a post-hoc efficacy analysis of the START study. Lancet. 2017; 389: 157–166.
82. Laidlaw TM. Clinical updates in aspirin-exacerbated respiratory disease. Allergy Asthma Proc. 2019; 40: 4–6.
83. Zhou Y, Zhong NS, Li X, et al. Tiotropium in early-stage chronic obstructive pulmonary disease. N Engl J Med. 2017; 377: 923–935.
84. Murphy PB, Rehal S, Arbane G, et al. Effect of home noninvasive ventilation with oxygen therapy vs oxygen therapy alone on hospital readmission or death after an acute COPD exacerbation: a randomized clinical trial. JAMA. 2017; 317: 2177–2186.
85. Albert RK, Au DH, Blackford AL, et al. A randomized trial of long-term oxygen for COPD with moderate desaturation. N Engl J Med. 2016; 375: 1617–1627.
86. Ekstram M, Ahmadi Z, Bornefalk-Hermansson A, et al. Oxygen for breathlessness in patients with chronic obstructive pulmonary disease who do not qualify for home oxygen therapy. Cochrane Database Syst Rev. 2016; 11: CD006429.
87. Yang IA, Clarke MS, Sim EH, et al. Inhaled corticosteroids for stable chronic obstructive pulmonary disease. Cochrane Database Syst Rev. 2012; 7: CD002991.
88. Vestbo J, Anderson JA, Brook RD, et al. Fluticasone furoate and vilanterol and survival in chronic obstructive pulmonary disease with heightened cardiovascular risk (SUMMIT): a double-blind randomised controlled trial. Lancet. 2016; 387: 1817–1826.
89. Vestbo J, Leather D, Diar Bakerly N, et al. Effectiveness of fluticasone furoate-vilanterol for COPD in clinical practice. N Engl J Med. 2016; 375: 1253–1260.
90. Martinez FJ, Vestbo J, Anderson JA, et al. Effect of fluticasone furoate and vilanterol on exacerbations of chronic obstructive pulmonary disease in patients with moderate airflow obstruction. Am J Respir Crit Care Med. 2017; 195: 881–888.
91. Wedzicha JA, Decramer M, Ficker JH, et al. Analysis of chronic obstructive pulmonary disease exacerbations with the dual bronchodilator QVA149 compared with glycopyrronium and tiotropium (SPARK): a randomised, double-blind, parallel-group study. Lancet Respir Med. 2013; 1: 199–209.
92. Wedzicha JA, Banerji D, Chapman KR, et al. Indacaterol-glycopyrronium versus salmeterol-fluticasone for COPD. N Engl J Med. 2016; 374: 2222–2234.
93. Lipson DA, Barnhart F, Brealey N, et al. Once-daily single-inhaler triple versus dual therapy in patients with COPD. N Engl J Med. 2018; 378: 1671–1680.
94. Papi A, Vestbo J, Fabbri L, et al. Extrafine inhaled triple therapy versus dual bronchodilator therapy in chronic obstructive pulmonary disease (TRIBUTE): a double-blind, parallel group, randomized controlled trial. Lancet. 2018; 391: 1076–1084.
95. Martinez FJ, Rabe KF, Sethi S, et al. Effect of roflumilast and inhaled corticosteroid/long-acting ?2-agonist on chronic obstructive pulmonary disease exacerbations (RE(2)SPOND). A randomized clinical trial. Am J Respir Crit Care Med. 2016; 194: 559–567.
96. Martinez FJ, Calverley PM, Goehring UM, et al. Effect of roflumilast on exacerbations in patients with severe chronic obstructive pulmonary disease uncontrolled by combination therapy (REACT): a multicentre randomised controlled trial. Lancet. 2015; 385: 857–866.
97. Pavord ID, Chanez P, Criner GJ, et al. Mepolizumab for eosinophilic chronic obstructive pulmonary disease. N Engl J Med. 2017; 377: 1613–1629.
98. McCarthy B, Casey D, Devane D, et al. Pulmonary rehabilitation for chronic obstructive pulmonary disease. Cochrane Database Syst Rev. 2015; 2: CD003793.
99. van Agteren JE, Hnin K, Grosser D, et al. Bronchoscopic lung volume reduction procedures for chronic obstructive pulmonary disease. Cochrane Database Syst Rev. 2017; 2: CD012158.
100. Leuppi JD, Schuetz P, Bingisser R, et al. Short-term vs conventional glucocorticoid therapy in acute exacerbations of chronic obstructive pulmonary disease: the REDUCE randomized clinical trial. JAMA. 2013; 309: 2223–2231.
101. Osadnik CR, Tee VS, Carson-Chahhoud KV, et al. Non-invasive ventilation for the management of acute hypercapnic respiratory failure due to exacerbation of chronic obstructive pulmonary disease. Cochrane Database Syst Rev. 2017; 7: CD004104.
102. Wedzicha JA, Banerji D, Chapman KR, et al. Indacaterol-glycopyrronium versus salmeterol-fluticasone for COPD. N Engl J Med. 2016; 374: 2222–2234.
103. Global Initiative for Chronic Obstructive Lung Disease (GOLD). Global strategy for the diagnosis, management and prevention of COPD. http://goldcopd.org. Accessed April 1, 2019.
104. Rabe KF, Watz H. Chronic obstructive pulmonary disease. Lancet. 2017; 389: 1931–1940.
105. Siddharthan T, Grigsby MR, Goodman D, et al. Association between household air pollution exposure and chronic obstructive pulmonary disease outcomes in 13 low- and middle-income country settings. Am J Respir Crit Care Med. 2018; 197: 611–620.
106. Kesimer M, Ford AA, Ceppe A, et al. Airway mucin concentration as a marker of chronic bronchitis. N Engl J Med. 2017; 377: 911–922.
107. Diab N, Gershon AS, Sin DD, et al. Underdiagnosis and overdiagnosis of chronic obstructive pulmonary disease. Am J Respir Crit Care Med. 2018; 198: 1130–1139.
108. Maselli DJ, Hardin M, Christenson SA, et al. Clinical approach to the therapy of asthma-COPD overlap. Chest. 2019; 155: 168–177.
109. Riley CM, Sciurba FC. Diagnosis and outpatient management of chronic obstructive pulmonary disease: a review. JAMA. 2019; 321: 786–797.
110. Siu AL, Bibbins-Domingo K, Grossman DC, et al. Screening for chronic obstructive pulmonary disease: US Preventive Services Task Force recommendation statement. JAMA. 2016; 315: 1372–1377.
111. Suissa S, Dell’Aniello S, Ernst P. Long-acting bronchodilator initiation in COPD and the risk of adverse cardiopulmonary events: a population-based comparative safety study. Chest. 2017; 151: 60–67.
112. Chapman KR, Burdon JG, Piitulainen E, et al. Intravenous augmentation treatment and lung density in severe ?1 antitrypsin deficiency (RAPID): a randomised, double-blind, placebo-controlled trial. Lancet. 2015; 386: 360–368.
113. Radtke T, Nevitt SJ, Hebestreit H, et al. Physical exercise training for cystic fibrosis. Cochrane Database Syst Rev. 2017; 11: CD002768.
114. Yang C, Montgomery M. Dornase alfa for cystic fibrosis. Cochrane Database Syst Rev. 2018; 9: CD001127.
115. Smith S, Rowbotham NJ, Regan KH. Inhaled anti-pseudomonal antibiotics for long-term therapy in cystic fibrosis. Cochrane Database Syst Rev. 2018; 3: CD001021.
116. Saiman L, Anstead M, Mayer-Hamblett N, et al. Effect of azithromycin on pulmonary function in patients with cystic fibrosis uninfected with Pseudomonas aeruginosa: a randomized controlled trial. JAMA. 2010; 303: 1707–1715.
117. Ramsey BW, Davies J, McElvaney NG, et al. A CFTR potentiator in patients with cystic fibrosis and the G551D mutation. N Engl J Med. 2011; 365: 1663–1672.
118. Wainwright CE, Elborn JS, Ramsey BW, et al. Lumacaftor-ivacaftor in patients with cystic fibrosis homozygous for Phe508del CFTR. N Engl J Med. 2015; 373: 220–231.
119. Taylor-Cousar JL, Jain M, Barto TL, et al. Lumacaftor/ivacaftor in patients with cystic fibrosis and advanced lung disease homozygous for F508del-CFTR. J Cyst Fibros. 2018; 17: 228–235.
120. Graeber SY, Dopfer C, Naehrlich L, et al. Effects of lumacaftor-ivacaftor therapy on cystic fibrosis transmembrane conductance regulator function in Phe508del homozygous patients with cystic fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2018; 197: 1433–1442.
121. Taylor-Cousar JL, Munck A, McKone EF, et al. Tezacaftor-ivacaftor in patients with cystic fibrosis homozygous for Phe508del. N Engl J Med. 2017; 377: 2013–2023.
122. Donaldson SH, Pilewski JM, Griese M, et al. Tezacaftor/ivacaftor in subjects with cystic fibrosis and F508del/F508del-CFTR or F508del/G551d-CFTR. Am J Respir Crit Care Med. 2018; 197: 214–224.
123. Keating D, Marigowda G, Burr L, et al. VX-445-tezacaftor-ivacaftor in patients with cystic fibrosis and one or two Phe508del alleles. N Engl J Med. 2018; 379: 1612–1620.
124. Davies JC, Moskowitz SM, Brown C, et al. VX-659-tezacaftor-ivacaftor in patients with cystic fibrosis and one or two Phe508del alleles. N Engl J Med. 2018; 379: 1599–1611.
125. Flores-Delgado G, Lytle C, Quinton PM. Site of fluid secretion in small airways. Am J Respir Cell Mol Biol. 2016; 54: 312–318.
126. Colombo C, Alicandro G. Liver disease in cystic fibrosis: illuminating the black box. Hepatology. 2019; 69: 1379–1381.
127. Elborn JS. Cystic fibrosis. Lancet. 2016; 388: 2519–2531.
128. Regard L, Martin C, Chassagnon G, et al. Acute and chronic non-pulmonary complications in adults with cystic fibrosis. Expert Rev Respir Med. 2019; 13: 23–28.
129. Wiencek JR, Lo SF. Advances in the diagnosis and management of cystic fibrosis in the genomic era. Clin Chem. 2018; 64: 898–908.
130. Gramegna A, Aliberti S, Seia M, et al. When and how ruling out cystic fibrosis in adult patients with bronchiectasis. Multidiscip Respir Med. 2018; 13: 29.
131. Szentpetery S, Flume PA. Optimizing outcomes of pulmonary exacerbations in cystic fibrosis. Curr Opin Pulm Med. 2018; 24: 606–611.
132. Hart SL, Harrison PT. Genetic therapies for cystic fibrosis lung disease. Curr Opin Pharmacol. 2017; 34: 119–124.
133. Ayoub F, Lascano J, Morelli G. Proton pump inhibitor use is associated with an increased frequency of hospitalization in patients with cystic fibrosis. Gastroenterology Res. 2017; 10: 288-293.
134. Gilmour JA, Sykes J, Etchells E, et al. Cystic fibrosis-related diabetes screening in adults: a gap analysis and evaluation of accuracy of glycated hemoglobin levels. Can J Diabetes. 2019; 43: 13–18.
135. Gilljam M, Nystrom U, Dellgren G, et al. Survival after lung transplantation for cystic fibrosis in Sweden. Eur J Cardiothorac Surg. 2017; 51: 571–576.
136. Breuer O, Caudri D, Stick S, et al. Predicting disease progression in cystic fibrosis. Expert Rev Respir Med. 2018; 1–13.
137. Stephenson AL, Sykes J, Stanojevic S, et al. Survival comparison of patients with cystic fibrosis in Canada and the United States: a population-based cohort study. Ann Intern Med. 2017; 166: 537–546.
138. Lee AL, Hill CJ, McDonald CF, et al. Pulmonary rehabilitation in individuals with non-cystic fibrosis bronchiectasis: a systematic review. Arch Phys Med Rehabil. 2017; 98: 774–782.
139. Lee AL, Burge AT, Holland AE. Airway clearance techniques for bronchiectasis. Cochrane Database Syst Rev. 2015; CD008351
140. Tarrant BJ, Le Maitre C, Romero L, et al. Mucoactive agents for chronic, non-cystic fibrosis lung disease: a systematic review and meta-analysis. Respirology. 2017; 22: 1084–1092.
141. Kelly C, Chalmers JD, Crossingham I, et al. Macrolide antibiotics for bronchiectasis. Cochrane Database Syst Rev. 2018; 3: CD012406.
142. Haworth CS, Foweraker JE, Wilkinson P, et al. Inhaled colistin in patients with bronchiectasis and chronic Pseudomonas aeruginosa infection. Am J Respir Crit Care Med. 2014; 189: 975–982.
143. Yang JW, Fan LC, Lu HW, et al. Efficacy and safety of long-term inhaled antibiotic for patients with noncystic fibrosis bronchiectasis: a meta-analysis. Clin Respir J. 2016; 10: 731–739.
144. Pantel H, Hwang J, Brams D, et al. Effect of incentive spirometry on postoperative hypoxemia and pulmonary complications after bariatric surgery: a randomized clinical trial. JAMA Surg. 2017; 152: 422–428.
145. Chotirmall SH, Chalmers JD. Bronchiectasis: an emerging global epidemic. BMC Pulm Med. 2018; 18: 1–3.
146. Coman I, Pola-Bibian B, Barranco P, et al. Bronchiectasis in severe asthma: clinical features and outcomes. Ann Allergy Asthma Immunol. 2018; 120: 409–413.
147. Smith MP. Diagnosis and management of bronchiectasis. CMAJ. 2017; 189: e828–e835.
148. Woodworth MH, Saullo JL, Lantos PM, et al. Increasing nocardia incidence associated with bronchiectasis at a tertiary care center. Ann Am Thorac Soc. 2017; 14: 347–354.
149. O’Donnell AE. Bronchiectasis update. Curr Opin Infect Dis. 2018; 31: 194–198.
150. Polverino E, Goeminne PC, McDonnell MJ, et al. European Respiratory Society guidelines for the management of adult bronchiectasis. Eur Respir J. 2017; 50: 1–23.
151. Welsh EJ, Evans DJ, Fowler SJ, et al. Interventions for bronchiectasis: an overview of Cochrane systematic reviews. Cochrane Database Syst Rev. 2015; 7: CD010337.
152. McIlwaine M, Bradley J, Elborn JS, et al. Personalising airway clearance in chronic lung disease. Eur Respir Rev. 2017; 26: 1–12.
153. Hill AT, Sullivan AL, Chalmers JD, et al. British Thoracic Society guideline for bronchiectasis in adults. Thorax. 2019; 74: 1–69.
154. Athanazio R, da Costa JC, de la Rosa Carrillo D, et al. Current and future pharmacotherapy options for non-cystic fibrosis bronchiectasis. Expert Rev Respir Med. 2018; 12: 569–584.
155. Fabre A, Treacy A, Lavelle LP, et al. Smoking-related interstitial fibrosis: evidence of radiologic regression with advancing age and smoking cessation. COPD. 2017; 14: 603–609.
156. Radzikowska E, Wiatr E, Langfort R, et al. Cryptogenic organizing pneumonia—results of treatment with clarithromycin versus corticosteroids—observational study. PLoS ONE. 2017; 12: 1–14.
157. Dellaripa PF. Interstitial lung disease in the connective tissue diseases; a paradigm shift in diagnosis and treatment. Clin Immunol. 2018; 186: 71–73.
158. Cottin V, Brown KK. Interstitial lung disease associated with systemic sclerosis (SSc-ILD). Respir Res. 2019; 20: 1–10.
159. Spagnolo P, Lee JC, Sverzellati N, et al. The lung in rheumatoid arthritis—focus on interstitial lung disease. Arthritis Rheumatol. 2018; 70: 1544–1554.
160. Ha YJ, Lee YJ, Kang EH. Lung involvements in rheumatic diseases: update on the epidemiology, pathogenesis, clinical features, and treatment. Biomed Res Int. 2018; 2018: 1–19.
161. Soumagne T, Dalphin JC. Current and emerging techniques for the diagnosis of hypersensitivity pneumonitis. Expert Rev Respir Med. 2018; 12: 493–507.
162. Vasakova M, Morell F, Walsh S, et al. Hypersensitivity pneumonitis: perspectives in diagnosis and management. Am J Respir Crit Care Med. 2017; 196: 680–689.
163. Vassallo R, Harari S, Tazi A. Current understanding and management of pulmonary Langerhans cell histiocytosis. Thorax. 2017; 72: 937–945.
164. Hyman DM, Puzanov I, Subbiah V, et al. Vemurafenib in multiple nonmelanoma cancers with BRAF V600 mutations. N Engl J Med. 2015; 373: 726–736.
165. Gupta N, Finlay GA, Kotloff RM, et al. Lymphangioleiomyomatosis diagnosis and management: high-resolution chest computed tomography, transbronchial lung biopsy, and pleural disease management. An official American Thoracic Society/Japanese Respiratory Society Clinical Practice Guideline. Am J Respir Crit Care Med. 2017; 196: 1337–1348.
166. Hoy RF, Baird T, Hammerschlag G, et al. Artificial stone-associated silicosis: a rapidly emerging occupational lung disease. Occup Environ Med. 2018; 75: 3–5.
167. Tarlo SM, Malo JL, de Blay F, et al. An official American Thoracic Society workshop report: presentations and discussion of the Sixth Jack Pepys Workshop on Asthma in the Workplace. Ann Am Thorac Soc. 2017; 14: 1361–1372.
168. Lau A, Tarlo SM. Update on the management of occupational asthma and work-exacerbated asthma. Allergy Asthma Immunol Res. 2019; 11: 188–200.
169. Tarlo SM, Arif AA, Delclos GL, et al. Opportunities and obstacles in translating evidence to policy in occupational asthma. Ann Epidemiol. 2018; 28: 392–400.
170. Global strategy for the diagnosis, management and prevention of COPD. Global Initiative for Chronic Obstructive Lung Disease (GOLD); 2018. http://goldcopd.org. Accessed January 29, 2019.
171. de Jong K, Vonk JM, Faiz A, et al. Novel genetic susceptibility loci for FEV1 in the context of occupational exposure in never-smokers. Am J Respir Crit Care Med. 2016; 194: 769–772.
172. Ferrando C, Romero C, Tusman G, et al. The accuracy of postoperative, non-invasive Air-Test to diagnose atelectasis in healthy patients after surgery: a prospective, diagnostic pilot study. BMJ Open. 2017; 7: 1–9.
173. Cilleruelo Ramos A, Ovelar Arribas Y, Garcia Yuste M. Cervical bronchogenic cyst in adults. Case report and literature review. Arch Bronconeumol. 2015; 51: 95–96.
174. Gupta N, Kopras EJ, Henske EP, et al. Spontaneous pneumothoraces in patients with Birt-Hogg-Dube syndrome. Ann Am Thorac Soc. 2017; 14: 706–713.
175. Raoof S, Bondalapati P, Vydyula R, et al. Cystic lung diseases: algorithmic approach. Chest. 2016; 150: 945–965.
176. Specks U, Merkel PA, Seo P, et al. Efficacy of remission-induction regimens for ANCA-associated vasculitis. N Engl J Med. 2013; 369: 417–427.
177. Guillevin L, Pagnoux C, Karras A, et al. Rituximab versus azathioprine for maintenance in ANCAassociated vasculitis. N Engl J Med. 2014; 371: 1771–1780.
178. Pugnet G, Pagnoux C, Terrier B, et al. Rituximab versus azathioprine for ANCA-associated vasculitis maintenance therapy: impact on global disability and health-related quality of life. Clin Exp Rheumatol 2016; 34: S54–S59.
179. Kumar A, Abdelmalak B, Inoue Y, et al. Pulmonary alveolar proteinosis in adults: pathophysiology and clinical approach. Lancet Respir Med. 2018; 6: 554–565.
180. Sui X, Du Q, Xu KF, et al. Quantitative assessment of pulmonary alveolar proteinosis (PAP) with ultra-dose CT and correlation with pulmonary function tests (PFTs). PLoS ONE. 2017; 12: 1–11.
181. Trapnell BC, Nakata K, Bonella F, et al. Pulmonary alveolar proteinosis. Nat Rev Dis Primers. 2019; 5: 1–17.
182. Gay P, Wallaert B, Nowak S, et al. Efficacy of whole-lung lavage in pulmonary alveolar proteinosis: a multicenter international study of GELF. Respiration. 2017; 93: 198–206.
183. Campo I, Luisetti M, Griese M, et al. Whole lung lavage therapy for pulmonary alveolar proteinosis: a global survey of current practices and procedures. Orphanet J Rare Dis. 2016; 11: 1–10.
184. Ohkouchi S, Akasaka K, Ichiwata T, et al. Sequential granulocyte-macrophage colony-stimulating factor inhalation after whole-lung lavage for pulmonary alveolar proteinosis. A report of five intractable cases. Ann Am Thorac Soc. 2017; 14: 1298–1304.
185. Batra K, Butt Y, Gokaslan T, et al. Pathology and radiology correlation of idiopathic interstitial pneumonias. Hum Pathol. 2018; 72: 1–17.
186. Lee CT, Oldham JM. Interstitial pneumonia with autoimmune features: overview of proposed criteria and recent cohort characterization. Clin Pulm Med. 2017; 24: 191–196.
187. Arai T, Tachibana K, Sugimoto C, et al. High-dose prednisolone after intravenous methylprednisolone improves prognosis of acute exacerbation in idiopathic interstitial pneumonias. Respirology. 2017; 22: 1363–1370.
188. Martanez-Mart?nez MU, Oostdam DAH, Abud-Mendoza C. Diffuse alveolar hemorrhage in autoimmune diseases. Curr Rheumatol Rep. 2017; 19: 1–6.
189. Quadrelli S, Dubinsky D, Solis M, et al. Immune diffuse alveolar hemorrhage: clinical presentation and outcome. Respir Med. 2017; 129: 59–62.
190. Truini A, Santos Pereira P, Cavazza A, et al. Classification of different patterns of pulmonary adenocarcinomas. Expert Rev Respir Med. 2015; 9: 571–586.
191. Cox ML, Yang CJ, Speicher PJ, et al. The role of extent of surgical resection and lymph node assessment for clinical stage I pulmonary lepidic adenocarcinoma: an analysis of 1991 patients. J Thorac Oncol. 2017; 12: 689–696.
192. Nathan SD, Albera C, Bradford WZ, et al. Effect of pirfenidone on mortality: pooled analyses and meta-analyses of clinical trials in idiopathic pulmonary fibrosis. Lancet Respir Med. 2017; 5: 33–41.
193. Ley B, Swigris J, Day BM, et al. Pirfenidone reduces respiratory-related hospitalizations in idiopathic pulmonary fibrosis. Am J Respir Crit Care Med. 2017; 196: 756–761.
194. Canestaro WJ, Forrester SH, Raghu G, et al. Drug treatment of idiopathic pulmonary fibrosis: systematic review and network meta-analysis. Chest. 2016;149:756–766.
195. Richeldi L, Cottin V, du Bois RM, et al. Nintedanib in patients with idiopathic pulmonary fibrosis: combined evidence from the TOMORROW and INPULSIS(®) trials. Respir Med. 2016; 113: 74–79.
196. Raghu G, van den Blink B, Hamblin MJ, et al. Effect of recombinant human pentraxin 2 vs placebo on change in forced vital capacity in patients with idiopathic pulmonary fibrosis: a randomized clinical trial. JAMA. 2018; 319: 2299–2307.
197. Kolb M, Raghu G, Wells AU, et al. Nintedanib plus sildenafil in patients with idiopathic pulmonary fibrosis. N Engl J Med. 2018; 379: 1722–1731.
198. Tashkin DP, Roth MD, Clements PJ, et al. Mycophenolate mofetil versus oral cyclophosphamide in scleroderma-related interstitial lung disease (SLS II): a randomised controlled, double-blind, parallel group trial. Lancet Respir Med. 2016; 4: 708–719.
199. Guillevin L, Pagnoux C, Karras A, et al. Rituximab versus azathioprine for maintenance in ANCAassociated vasculitis. N Engl J Med. 2014; 371: 1771–1780.
200. Wechsler ME, Akuthota P, Jayne D, et al. Mepolizumab or placebo for eosinophilic granulomatosis with polyangiitis. N Engl J Med. 2017; 376: 1921–1932.
201. Duchemann B, Annesi-Maesano I, Jacobe de Naurois C, et al. Prevalence and incidence of interstitial lung diseases in a multi-ethnic county of Greater Paris. Eur Respir J. 2017; 50: 1–12.
202. Newton CA, Molyneaux PL, Oldham JM. Clinical genetics in interstitial lung disease. Front Med (Lausanne). 2018; 5: 116–125.
203. Delaunay M, Cadranel J, Lusque A, et al. Immune-checkpoint inhibitors associated with interstitial lung disease in cancer patients. Eur Respir J. 2017; 50: 1–13.
204. Wells AU, Maher TM. Update in interstitial lung disease 2016. Am J Respir Crit Care Med. 2017; 196: 132–138.
205. Martinez FJ, Collard HR, Pardo A, et al. Idiopathic pulmonary fibrosis. Nat Rev Dis Primers. 2017; 17074: 1–19.
206. Richeldi L, Collard HR, Jones MG. Idiopathic pulmonary fibrosis. Lancet. 2017; 389: 1941–1952.
207. Lederer DJ, Martinez FJ. Idiopathic pulmonary fibrosis. N Engl J Med. 2018; 378: 1811–1823.
208. Kolilekas L, Papiris S, Bouros D. Existing and emerging treatments for idiopathic pulmonary fibrosis. Expert Rev Respir Med. 2019; 1–11.
209. Raghu G, Pellegrini CA, Yow E, et al. Laparoscopic anti-reflux surgery for the treatment of idiopathic pulmonary fibrosis (WRAP-IPF): a multicentre, randomised, controlled phase 2 trial. Lancet Respir Med. 2018; 6: 707–714.
210. Fernandez Fabrellas E, Peris Sanchez R, Sabater Abad C, et al. Prognosis and follow-up of idiopathic pulmonary fibrosis. Med Sci (Basel). 2018; 6: 51–66.
211. Tagiyeva N, Sadhra S, Mohammed N, et al. Occupational airborne exposure in relation to chronic obstructive pulmonary disease (COPD) and lung function in individuals without childhood wheezing illness: a 50-year cohort study. Environ Res. 2017; 153: 126–134.
212. Chiba S, Tsuchiya K, Akashi T, et al. Chronic hypersensitivity pneumonitis with a usual interstitial pneumonia-like pattern: correlation between histopathologic and clinical findings. Chest. 2016; 149: 1473–1481.
213. Barber CM, Wiggans RE, Carder M, et al. Epidemiology of occupational hypersensitivity pneumonitis; reports from the SWORD scheme in the UK from 1996 to 2015. Occup Environ Med. 2017; 74: 528–530.
214. Soumagne T, Dalphin JC. Current and emerging techniques for the diagnosis of hypersensitivity pneumonitis. Expert Rev Respir Med. 2018; 12: 493–507.
215. Sack CS, Doney BC, Podolanczuk AJ, et al. Occupational exposures and subclinical interstitial lung disease. The MESA (multi-ethnic study of atherosclerosis) air and lung studies. Am J Respir Crit Care Med. 2017; 196: 1031–1039.
216. Morisset J, Johannson KA, Vittinghoff E, et al. Use of mycophenolate mofetil or azathioprine for the management of chronic hypersensitivity pneumonitis. Chest. 2017; 151: 619–625.
217. Kreiss K, Fechter-Leggett ED, McCanlies EC, et al. Research to practice implications of high-risk genotypes for beryllium sensitization and disease. J Occup Environ Med. 2016; 58: 855–860.
218. Liu Y, Zhou Y, Hnizdo E, et al. Total and cause-specific mortality risk associated with low-level exposure to crystalline silica: a 44-year cohort study from China. Am J Epidemiol. 2017; 186: 481–490.
219. Gilham C, Rake C, Burdett G, et al. Pleural mesothelioma and lung cancer risks in relation to occupational history and asbestos lung burden. Occup Environ Med. 2016; 73: 290–299.
220. Poinen-Rughooputh S, Rughooputh MS, Guo Y, et al. Occupational exposure to silica dust and risk of lung cancer: an updated meta-analysis of epidemiological studies. BMC Public Health. 2016; 16: 1–9.
221. World Health Organization. IARC monographs on the identification of carcinogenic hazards to humans; 2018. https://monographs.iarc.who.int/monographs-available/. Accessed January 29, 2019.
222. McIntosh SE, Hemphill M, McDevitt MC, et al. Reduced acetazolamide dosing in countering altitude llness: a comparison of 62.5 vs 125 mg (the RADICAL trial). Wilderness Environ Med. 2019; 30: 12–21.
223. Nieto Estrada VH, Molano Franco D, Medina RD, et al. Interventions for preventing high altitude illness: part 1. Commonly-used classes of drugs. Cochrane Database Syst Rev. 2017; 6: CD009761.
224. Tang E, Chen Y, Luo Y. Dexamethasone for the prevention of acute mountain sickness: systematic review and meta-analysis. Int J Cardiol. 2014; 173: 133–138.
225. Pandit A, Karmacharya P, Pathak R, et al. Efficacy of NSAIDs for the prevention of acute mountain sickness: a systematic review and meta-analysis. J Community Hosp Intern Med Perspect. 2014; 4: 1–7.
226. Xu Y, Liu Y, Liu J, et al. Meta-analysis of clinical efficacy of sildenafil, a phosphodiesterase type-5 inhibitor on high altitude hypoxia and its complications. High Alt Med Biol. 2014; 15: 46–51.
227. Sharma S, Gralla J, Ordonez JG, et al. Acetazolamide and N-acetylcysteine in the treatment of chronic mountain sickness (Monge’s disease). Respir Physiol Neurobiol. 2017; 246: 1–8.
228. Bennett MH, Lehm JP, Mitchell SJ, et al. Recompression and adjunctive therapy for decompression illness. Cochrane Database Syst Rev. 2012; 5: CD005277.
229. Tyler MD, Richards DB, Reske-Nielsen C, et al. The epidemiology of drowning in low- and middleincome countries: a systematic review. BMC Public Health. 2017; 17: 1–7.
230. Schmidt AC, Sempsrott JR, Hawkins SC, et al. Wilderness medical society practice guidelines for the prevention and treatment of drowning. Wilderness Environ Med. 2016; 27: 236–251.
231. Davis C, Hackett P. Advances in the prevention and treatment of high altitude illness. Emerg Med Clin North Am. 2017; 35: 241–260.
232. Meier D, Collet TH, Locatelli I, et al. Does this patient have acute mountain sickness? The rational clinical examination systematic review. JAMA. 2017; 318: 1810–1819.
233. Pollock NW, Buteau D. Updates in decompression illness. Emerg Med Clin North Am. 2017; 35: 301–319.
234. Divers Alert Network. https://dan.org/. Accessed January 28, 2019.
235. Sheridan RL. Fire-related inhalation injury. N Engl J Med. 2016; 375: 464–469.
236. Enkhbaatar P, Pruitt BA Jr, Suman O, et al. Pathophysiology, research challenges, and clinical management of smoke inhalation injury. Lancet. 2016; 388: 1437–1446.
237. McIntire AM, Harris SA, Whitten JA, et al. Outcomes following the use of nebulized heparin for inhalation injury (HIHI study). J Burn Care Res. 2017; 38: 45–52.
238. Rose JJ, Wang L, Xu Q, et al. Carbon monoxide poisoning: pathogenesis, management, and future directions of therapy. Am J Respir Crit Care Med. 2017; 195: 596–606.
239. Zazzeron L, Liu C, Franco W, et al. Pulmonary phototherapy for treating carbon monoxide poisoning. Am J Respir Crit Care Med. 2015; 192: 1191–1199.
240. Azarov I, Wang L, Rose JJ, et al. Five-coordinate h64q neuroglobin as a ligand-trap antidote for carbon monoxide poisoning. Sci Transl Med. 2016; 8: 1–15.
241. Jeon SB, Sohn CH, Seo DW, et al. Acute brain lesions on magnetic resonance imaging and delayed neurological sequelae in carbon monoxide poisoning. JAMA Neurol. 2018; 75: 436–443.
242. Bledsoe TJ, Nath SK, Decker RH. Radiation pneumonitis. Clin Chest Med. 2017; 38: 201–208.
243. Andreu G, Boudjedir K, Muller JY, et al. Analysis of transfusion-related acute lung injury and possible transfusion-related acute lung injury reported to the French Hemovigilance Network from 2007 to 2013. Transfus Med Rev. 2018; 32: 16–27.
244. Madan K, Dhungana A, Mohan A, et al. Conventional transbronchial needle aspiration versus endobronchial ultrasound-guided transbronchial needle aspiration, with or without rapid on-site evaluation,for the diagnosis of sarcoidosis: a randomized controlled trial. J Bronchology Interv Pulmonol. 2017; 24: 48–58.
245. Baughman RP, Culver DA, Cordova FC, et al. Bosentan for sarcoidosis-associated pulmonary hypertension: a double-blind placebo controlled randomized trial. Chest. 2014; 145: 810–817.
246. Pariser RJ, Paul J, Hirano S, et al. A double-blind, randomized, placebo-controlled trial of adalimumab in the treatment of cutaneous sarcoidosis. J Am Acad Dermatol. 2013; 68: 765–773.
247. Terwiel M, van Moorsel CHM. Clinical epidemiology of familial sarcoidosis: a systematic literature review. Respir Med. 2018. [Epub ahead of print.].
248. Broos CE, Hendriks RW, Kool M. T-cell immunology in sarcoidosis: disruption of a delicate balance between helper and regulatory T-cells. Curr Opin Pulm Med. 2016; 22: 476–483.
249. Celada LJ, Hawkins C, Drake WP. The etiologic role of infectious antigens in sarcoidosis pathogenesis. Clin Chest Med. 2015; 36: 561–568.
250. Esteves T, Aparicio G, Garcia-Patos V. Is there any association between sarcoidosis and infectious agents? A systematic review and meta-analysis. BMC Pulm Med. 2016; 16: 1–13.
251. Rivera NV, Ronninger M, Shchetynsky K, et al. High-density genetic mapping identifies new susceptibility variants in sarcoidosis phenotypes and shows genomic-driven phenotypic differences Am J Respir Crit Care Med. 2016; 193: 1008–1022.
252. Spagnolo P, Rossi G, Trisolini R, et al. Pulmonary sarcoidosis. Lancet Respir Med. 2018; 6: 389–402.
253. Kouranos V, Tzelepis GE, Rapti A, et al. Complementary role of CMR to conventional screening in the diagnosis and prognosis of cardiac sarcoidosis. JACC Cardiovasc Imaging. 2017; 10: 1437–1447.
254. Tan JL, Fong HK, Birati EY, et al. Cardiac sarcoidosis. Am J Cardiol. 2019; 123: 513–522.
255. Fritz D, van de Beek D, Brouwer MC. Clinical features, treatment and outcome in neurosarcoidosis: systematic review and meta-analysis. BMC Neurol. 2016; 16: 1–8.
256. Kim SJ, Pak K, Kim K. Diagnostic performance of F-18 FDG PET for detection of cardiac sarcoidosis; a systematic review and meta-analysis. J Nucl Cardiol. 2019. [Epub ahead of print.].
257. Lomax AJ, McGuire HM, McNeil C, et al. Immunotherapy-induced sarcoidosis in patients with melanoma treated with PD-1 checkpoint inhibitors: case series and immunophenotypic analysis. Int J Rheum Dis. 2017; 20: 1277–1285.
258. Jamilloux Y, Cohen-Aubart F, Chapelon-Abric C, et al. Efficacy and safety of tumor necrosis factor antagonists in refractory sarcoidosis: a multicenter study of 132 patients. Semin Arthritis Rheum. 2017; 47: 288–294.
259. Vorselaars AD, Crommelin HA, Deneer VH, et al. Effectiveness of infliximab in refractory FDG PET-positive sarcoidosis. Eur Respir J. 2015; 46: 175–185.
260. Bitoun S, Bouvry D, Borie R, et al. Treatment of neurosarcoidosis: a comparative study of methotrexate and mycophenolate mofetil. Neurology. 2016; 87: 2517–2521.
261. Gelfand JM, Bradshaw MJ, Stern BJ, et al. Infliximab for the treatment of CNS sarcoidosis: a multiinstitutional series. Neurology. 2017; 89: 2092–2100.
262. Schuetz P, Wirz Y, Sager R, et al. Effect of procalcitonin-guided antibiotic treatment on mortality in acute respiratory infections: a patient level meta-analysis. Lancet Infect Dis. 2018; 18: 95–107.
263. Huang DT, Yealy DM, Filbin MR, et al. Procalcitonin-guided use of antibiotics for lower respiratory tract infection. N Engl J Med. 2018; 379: 236–249.
264. Smith SM, Fahey T, Smucny J, et al. Antibiotics for acute bronchitis. Cochrane Database Syst Rev. 2017; 6: CD000245.
265. de la Poza Abad M, Mas Dalmau G, Moreno Bakedano M, et al. Prescription strategies in acute uncomplicated respiratory infections: a randomized clinical trial. JAMA Intern Med. 2016; 176: 21–29.
266. Meeker D, Linder JA, Fox CR, et al. Effect of behavioral interventions on inappropriate antibiotic prescribing among primary care practices: a randomized clinical trial. JAMA. 2016; 315: 562–570.
267. Hay AD, Little P, Harnden A, et al. Effect of oral prednisolone on symptom duration and severity in nonasthmatic adults with acute lower respiratory tract infection: a randomized clinical trial. JAMA. 2017; 318: 721–730.
268. Smith JA, Woodcock A. Chronic cough. N Engl J Med. 2016; 375: 1544–1551.
269. Silverman M, Povitz M, Sontrop JM, et al. Antibiotic prescribing for nonbacterial acute upper respiratory infections in elderly persons. Ann Intern Med. 2017; 166: 765–774.
270. Branche A, Neeser O, Mueller B, et al. Procalcitonin to guide antibiotic decision making. Curr Opin Infect Dis. 2019. [Epub ahead of print.]
271. Schuetz P, Wirz Y, Mueller B. Procalcitonin testing to guide antibiotic therapy in acute upper and lower respiratory tract infections. JAMA. 2018; 319: 925–926.
272. Harris AM, Hicks LA, Qaseem A. Appropriate antibiotic use for acute respiratory tract infection in adults: advice for high-value care from the American College of Physicians and the Centers for Disease Control and Prevention. Ann Intern Med. 2016; 164: 425–434.
273. Schuetz P, Wirz Y, Sager R, et al. Effect of procalcitonin-guided antibiotic treatment on mortality in acute respiratory infections: a patient level meta-analysis. Lancet Infect Dis. 2018; 18: 95–107.
274. Huang DT, Yealy DM, Filbin MR, et al. Procalcitonin-guided use of antibiotics for lower respiratory tract infection. N Engl J Med. 2018; 379: 236–249.
275. Eljaaly K, Alshehri S, Aljabri A, et al. Clinical failure with and without empiric atypical bacteria coverage in hospitalized adults with community-acquired pneumonia: a systematic review and meta-analysis. BMC Infect Dis. 2017; 17: 1–7.
276. Garin N, Genne D, Carballo S, et al. ?-lactam monotherapy vs ?-lactam-macrolide combination treatment in moderately severe community-acquired pneumonia: a randomized noninferiority trial. JAMA Intern Med. 2014; 174: 1894–1901.
277. Postma DF, van Werkhoven CH, van Elden LJ, et al. Antibiotic treatment strategies for community-acquired pneumonia in adults. N Engl J Med. 2015; 372: 1312–1323.
278. Wu WF, Fang Q, He GJ. Efficacy of corticosteroid treatment for severe community-acquired pneumonia: a meta-analysis. Am J Emerg Med. 2018; 36: 179–184.
279. Stern A, Skalsky K, Avni T, et al. Corticosteroids for pneumonia. Cochrane Database Syst Rev. 2017; 12: CD007720.
280. Hanretty AM, Gallagher JC. Shortened courses of antibiotics for bacterial infections: a systematic review of randomized controlled trials. Pharmacotherapy. 2018; 38: 674–687.
281. Falkenhorst G, Remschmidt C, Harder T, et al. Effectiveness of the 23-valent pneumococcal polysaccharide vaccine (PPV23) against pneumococcal disease in the elderly: systematic review and meta-analysis. PLoS ONE. 2017; 12: 1–18.
282. Redden MD, Chin TY, van Driel ML. Surgical versus non-surgical management for pleural empyema. Cochrane Database Syst Rev. 2017; 3: CD010651.
283. Ramirez JA, Wiemken TL, Peyrani P, et al. Adults hospitalized with pneumonia in the United States: incidence, epidemiology, and mortality. Clin Infect Dis. 2017; 65: 1806–1812.
284. D’Amato M, Rea G, Carnevale V, et al. Assessment of thoracic ultrasound in complementary diagnosis and in follow-up of community-acquired pneumonia (CAP). BMC Med Imaging. 2017; 17: 1–8.
285. Schuetz P, Wirz Y, Mueller B. Procalcitonin testing to guide antibiotic therapy in acute upper and lower respiratory tract infections. JAMA. 2018; 319: 925–926.
286. Parrott G, Nebeya D, Kinjo T, et al. Etiological analysis and epidemiological comparison among adult CAP and NHCAP patients in Okinawa, Japan. J Infect Chemother. 2017; 23: 452–458.
287. Mongodi S, Via G, Girard M, et al. Lung ultrasound for early diagnosis of ventilator-associated pneumonia. Chest. 2016; 149: 969–980.
288. Metersky ML, Kalil AC. Management of ventilator-associated pneumonia: guidelines. Clin Chest Med. 2018; 39: 797–808.
289. Li Bassi G, Senussi T, Aguilera Xiol E. Prevention of ventilator-associated pneumonia. Curr Opin Infect Dis. 2017; 30: 214–220.
290. Pick HJ, Bolton CE, Lim WS, et al. Patient reported outcome measures in the recovery of adults hospitalised with community-acquired pneumonia: a systematic review. Eur Respir J. 2019. [Epub ahead of print.]
291. Cejudo P., Lopez-Marquez I., Lopez-Campos J.L., et al. Exercise training in patients with chronic respiratory failure due to kyphoscoliosis: a randomized controlled trial. Respir Care. 2014; 59: 375–382.
292. Weinstein S.L., Dolan L.A., Wright J.G., et al. Effects of bracing in adolescents with idiopathic scoliosis. N Engl J Med. 2013; 369: 1512–1521.
293. Pecourneau V., Degboe Y., Barnetche T., et al. Effectiveness of exercise programs in ankylosing spondylitis: a meta-analysis of randomized controlled trials. Arch Phys Med Rehabil. 2018; 99: 383–389.
294. Redden M.D., Chin T.Y., van Driel M.L. Surgical versus non-surgical management for pleural empyema. Cochrane Database Syst Rev. 2017; 3: CD010651.
295. Nie W., Liu Y., Ye J., et al. Efficacy of intrapleural instillation of fibrinolytics for treating pleural empyema and parapneumonic effusion: a meta-analysis of randomized control trials. Clin Respir J. 2014; 8: 281–291.
296. Clive A.O., Jones H.E., Bhatnagar R., et al. Interventions for the management of malignant pleural effusions: a network meta-analysis. Cochrane Database Syst Rev. 2016; 5: CD010529.
297. Iyer N.P., Reddy C.B., Wahidi M.M., et al. Indwelling pleural catheter versus pleurodesis for malignant pleural effusions: a systematic review and meta-analysis. Ann Am Thorac Soc. 2019; 16: 124–131.
298. Bhatnagar R., Keenan E.K., Morley A.J., et al. Outpatient talc administration by indwelling pleural catheter for malignant effusion. N Engl J Med. 2018; 378: 1313–1322.
299. Wahidi M.M., Reddy C., Yarmus L., et al. Randomized trial of pleural fluid drainage frequency in patients with malignant pleural effusions. The ASAP trial. Am J Respir Crit Care Med. 2017; 195: 1050–1057.
300. Carson-Chahhoud K.V., Wakai A., van Agteren J.E., et al. Simple aspiration versus intercostal tube drainage for primary spontaneous pneumothorax in adults. Cochrane Database Syst Rev. 2017; 9: CD004479.
301. Chen J.S., Chan W.K., Tsai K.T., et al. Simple aspiration and drainage and intrapleural minocycline pleurodesis versus simple aspiration and drainage for the initial treatment of primary spontaneous pneumothorax: an open-label, parallel-group, prospective, randomised, controlled trial. Lancet. 2013; 381: 1277–1282.
302. Duba B.P., Dres M. Diaphragm dysfunction: diagnostic approaches and management strategies. J Clin Med. 2016; 5: 1–20.
303. Jada A., Mackel C.E., Hwang S.W., et al. Evaluation and management of adolescent idiopathic scoliosis: a review. Neurosurg Focus. 2017; 43: 1–9.
304. Dunn J., Henrikson N.B., Morrison C.C., et al. Screening for adolescent idiopathic scoliosis: evidence report and systematic review for the US Preventive Services Task Force. JAMA. 2018; 319: 173–187.
305. Dennis B.M., Bellister S.A., Guillamondegui OD. Thoracic trauma. Surg Clin North Am. 2017; 97: 1047–1064.
306. Herrera Lara S., Fern?ndez-Fabrellas E., Juan Samper G., et al. Predicting malignant and paramalignant pleural effusions by combining clinical, radiological and pleural fluid analytical parameters. Lung. 2017; 195: 653–660.
307. Liu R.B., Donroe J.H., McNamara R.L., et al. The practice and implications of finding fluid during point-of-care ultrasonography: a review. JAMA Intern Med. 2017; 177: 1818–1825.
308. Feller-Kopman D., Light R. Pleural disease. N Engl J Med. 2018; 378: 740–751.
309. Toubes M.E., Lama A., Ferreiro L., et al. Urinothorax: a systematic review. J Thorac Dis. 2017; 9: 1209–1218.
310. Herrera Lara S., Fernandez-Fabrellas E., Juan Samper G., et al. Predicting malignant and paramalignant pleural effusions by combining clinical, radiological and pleural fluid analytical parameters. Lung. 2017; 195: 653–660.
311. Feller-Kopman D.J., Reddy C.B., DeCamp M.M., et al. Management of malignant pleural effusions: an official ATS/STS/STR clinical practice guideline. Am J Respir Crit Care Med. 2018; 198: 839–849.
312. Mishra E.K., Clive A.O., Wills G.H., et al. Randomized controlled trial of urokinase versus placebo for nondraining malignant pleural effusion. Am J Respir Crit Care Med. 2018; 197: 502–508.
313. Waller D.A., Dawson A.G. Randomized controlled trials in malignant pleural mesothelioma surgery-mistakes made and lessons learned. Ann Transl Med. 2017; 5: 1–6.
314. Kindler H.L., Ismaila N., Armato S.G. 3rd, et al. Treatment of malignant pleural mesothelioma: American Society of Clinical Oncology clinical practice guideline. J Clin Oncol. 2018; 36: 1343–1373.
315. Wald O., Sugarbaker D.J. New concepts in the treatment of malignant pleural mesothelioma. Annu Rev Med. 2018; 69: 365–377.
316. Grosso F., Steele N., Novello S., et al. Nintedanib plus pemetrexed/cisplatin in patients with malignant pleural mesothelioma: phase II results from the randomized, placebo-controlled LUME-meso trial. J Clin Oncol. 2017; 35: 3591–3600.
317. Hallifax R.J., Goldacre R., Landray M.J., et al. Trends in the incidence and recurrence of inpatient-treated spontaneous pneumothorax, 1968?2016. JAMA. 2018; 320: 1471–1480.
318. Torrego A., Sola I., Munoz A.M., et al. Bronchial thermoplasty for moderate or severe persistent asthma in adults. Cochrane Database Syst Rev. 2014; 3: CD009910.
319. Sciurba F.C., Criner G.J., Strange C., et al. Effect of endobronchial coils vs usual care on exercise tolerance in patients with severe emphysema: the RENEW randomized clinical trial. JAMA. 2016; 315: 2178–2189.
320. Davey C., Zoumot Z., Jordan S., et al. Bronchoscopic lung volume reduction with endobronchial valves for patients with heterogeneous emphysema and intact interlobar fissures (the BeLieVeR-HIFi study): a randomised controlled trial. Lancet. 2015; 386: 1066–1073.
321. Klooster K., ten Hacken N.H., Hartman J.E., et al. Endobronchial valves for emphysema without interlobar collateral ventilation. N Engl J Med. 2015; 373: 2325–2335.
322. Valipour A., Slebos D.J., Herth F., et al. Endobronchial valve therapy in patients with homogeneous emphysema. Results from the IMPACT study. Am J Respir Crit Care Med. 2016; 194: 1073–1082.
323. Kemp S.V., Slebos D.J., Kirk A., et al. A multicenter randomized controlled trial of zephyr endobronchial valve treatment in heterogeneous emphysema (TRANSFORM). Am J Respir Crit Care Med. 2017; 196: 1535–1543.
324. Deslee G., Mal H., Dutau H., et al. Lung volume reduction coil treatment vs usual care in patients with severe emphysema: the REVOLENS randomized clinical trial. JAMA. 2016; 315: 175–184.
325. Criner G.J., Sue R., Wright S., et al. A multicenter randomized controlled trial of Zephyr endobronchial valve treatment in heterogeneous emphysema (LIBERATE). Am J Respir Crit Care Med. 2018; 198: 1151–1164.
326. Van Agteren J.E., Hnin K., Grosser D., et al. Bronchoscopic lung volume reduction procedures for chronic obstructive pulmonary disease. Cochrane Database Syst Rev. 2017; 2: CD012158.
327. Navani N., Nankivell M., Lawrence D.R., et al. Lung cancer diagnosis and staging with endobronchial ultrasound-guided transbronchial needle aspiration compared with conventional approaches: an open-label, pragmatic, randomised controlled trial. Lancet Respir Med. 2015; 3: 282–289.
328. Ge X., Guan W., Han F., et al. Comparison of endobronchial ultrasound-guided fine needle aspiration and video-assisted mediastinoscopy for mediastinal staging of lung cancer. Lung. 2015; 193: 757–766.
329. Munoz M.L., Lechtzin N., Li Q.K., et al. Bronchoscopy with endobronchial ultrasound guided transbronchial needle aspiration vs. transthoracic needle aspiration in lung cancer diagnosis and staging. J Thorac Dis. 2017; 9: 2178–2185.
330. Murgu S.D., Egressy K., Laxmanan B., et al. Central airway obstruction: benign strictures, tracheobronchomalacia, and malignancy-related obstruction. Chest. 2016; 150: 426–441.
331. Chan E.Y., Gaur P., Ge Y., et al. Management of the solitary pulmonary nodule. Arch Pathol Lab Med. 2017; 141: 927–931.
332. Chen S., Geraci T.C., Cerfolio R.J. Techniques for lung surgery: a review of robotic lobectomy. Expert Rev Respir Med. 2018; 12: 315–322.
333. Clarenbach C.F., Sievi N.A., Brock M., et al. Lung volume reduction surgery and improvement of endothelial function and blood pressure in patients with chronic obstructive pulmonary disease. A randomized controlled trial. Am J Respir Crit Care Med. 2015; 192: 307–314.
334. Dunlap D.G., Semaan R., Riley C.M., et al. Bronchoscopic device intervention in chronic obstructive pulmonary disease. Curr Opin Pulm Med. 2019; 25: 201–210.
335. Chambers D.C., Yusen R.D., Cherikh W.S., et al. The Registry of the International Society for Heart and Lung Transplantation: thirty-fourth adult lung and heart-lung transplantation report—2017. J Heart Lung Transplant. 2017; 36: 1047–1059.
336. Weill D. Lung transplantation: indications and contraindications. J Thorac Dis. 2018; 10: 4574–4587.
337. Verleden S.E., Vos R., Vanaudenaerde B.M., et al. Chronic lung allograft dysfunction phenotypes and treatment. J Thorac Dis. 2017; 9: 2650–2659.
338. Valapour M., Skeans M.A., Smith J.M., et al. OPTN/SRTR 2015 annual data report: lung. Am J Transplant. 2017; 17: 357–424.

Труды отечественных авторов при подготовке статей по терапии для пользователей сайта - не использовались, так как их вы всегда можете найти в библиотеках.

- Вернуться в оглавление раздела "Терапия"

Редактор: Искандер Милевски. Дата обновления публикации: 5.12.2024